Pregled sestavin florotaninov v Fucalesu, 4. del
Jul 03, 2023
6. Sklepne opombe
Če povzamemo, Fucales obsegajo veliko skupino vrst morskih alg z veliko variabilnostjo v smislu spojin florotanina. Spektrofotometrični testi so lahko koristno orodje za visoko zmogljivo, enostavno in stroškovno učinkovito presejanje vsebnosti florotanina. Vendar so za ločevanje, kvantificiranje in karakterizacijo teh spojin bistvene robustne analitske tehnike. Trenutno MS skupaj s HPLC ponuja zadovoljiv pristop za ločevanje in karakterizacijo oligomernih florotaninov. Pomembne izboljšave je prinesel tudi razvoj bolj specializirane opreme, kot sta UHPLC in HRMS. Kadar pa so potrebne vse podrobnosti o položajih povezav in izomernih oblikah, lahko samo NMR ponudi to zmogljivost.
Glikozid cistanche lahko tudi poveča aktivnost SOD v srčnem in jetrnem tkivu ter znatno zmanjša vsebnost lipofuscina in MDA v vsakem tkivu, učinkovito lovi različne reaktivne kisikove radikale (OH-, H₂O₂ itd.) in ščiti pred povzročeno poškodbo DNK z OH-radikali. Cistanche feniletanoidni glikozidi imajo močno sposobnost lovljenja prostih radikalov, večjo redukcijsko sposobnost kot vitamin C, izboljšajo aktivnost SOD v suspenziji semenčic, zmanjšajo vsebnost MDA in imajo določen zaščitni učinek na delovanje membrane semenčic. Cistanche polisaharidi lahko povečajo aktivnost SOD in GSH-Px v eritrocitih in pljučnem tkivu eksperimentalno starajočih se miši, ki jih povzroča D-galaktoza, pa tudi zmanjšajo vsebnost MDA in kolagena v pljučih in plazmi ter povečajo vsebnost elastina. dober čistilni učinek na DPPH, podaljša čas hipoksije pri starajočih se miših, izboljša aktivnost SOD v serumu in upočasni fiziološko degeneracijo pljuč pri eksperimentalno starajočih se miših. Pri celični morfološki degeneraciji so poskusi pokazali, da ima Cistanche dobro antioksidativno sposobnost in ima potencial, da postane zdravilo za preprečevanje in zdravljenje bolezni staranja kože. Hkrati ima ehinakozid v Cistanche pomembno sposobnost čiščenja prostih radikalov DPPH in ima sposobnost čiščenja reaktivnih kisikovih vrst ter preprečuje razgradnjo kolagena, ki jo povzročijo prosti radikali, ima pa tudi dober učinek popravljanja na poškodbe anionov prostih radikalov timina.


Kljub temu pa ta oprema ni najbolj ugodna/dostopna za laboratorije. Razpoložljivost bolj standardnih spojin bi lahko prispevala k boljši uporabi HPLC, saj bi ustvarila zanesljive knjižnice za primerjavo. Druga možnost je, da bi preučevanje in prepoznavanje običajnih PT spojin z NMR spektroskopijo, njihovo povezovanje z retenzijskimi časi HPLC in UV-spektralnimi podatki lahko predstavljalo še en korak naprej za raziskovalno skupnost.
Avtorski prispevki:Konceptualizacija—MDC in SMC; pregled literature in pisanje izvirnega osnutka—MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Vsi avtorji so sodelovali pri pisanju—pregledovanje in urejanje. Vsi avtorji so prebrali in se strinjali z objavljeno različico rokopisa.

financiranje: To delo je prejelo finančno podporo iz nacionalnih skladov PT (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia in Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior) prek projektov UIDB/50006/2020 in UIDP/50006/2020. Zahvaljujoč PTDC/BAA-AGR/31015/2017, "Algaphlor—florotanini rjavih alg: od biološke uporabnosti do razvoja novih funkcionalnih živil", sofinanciran iz Operativnega programa za konkurenčnost in internacionalizacijo — POCI, v okviru Evropskega sklada za regionalni razvoj (FEDER) in Fundacija za znanost in tehnologijo (FCT) prek nacionalnih sredstev. Silva S. se zahvaljuje FCT za financiranje prek programa DL 57/2016–Norma transitória (Ref. SFRH/BPD/74299/2010).
Nasprotja interesov:Avtorji izjavljajo, da ni navzkrižja interesov.
Reference
1. Cho, GY; Rousseau, F.; de Reviers, B.; Boo, SM; Reviers, BDE; Cho, GY; Rousseau, F.; Reviers, BDE Filogenetski odnosi znotraj Fucales (Phaeophyceae), ocenjeni s fotosistemom I, ki kodira zaporedja PsaA. Phycologia 2006, 45, 512–519. [CrossRef]
2. Baweja, P.; Kumar, S.; Sahoo, D.; Levine, I. Biologija morskih alg. V Morske alge v zdravju in preprečevanju bolezni; Elsevier: Amsterdam, Nizozemska, 2016; strani 41–106.
3. Bermejo, R.; Chefaoui, RM; Engelen, AH; Buonomo, R.; Neiva, J.; Ferreira-Costa, J.; Pearson, GA; Marbà, N.; Duarte, CM; Airoldi, L.; et al. Morski gozdovi sredozemsko-atlantskega kompleksa Cystoseira tamariscifolia kažejo južnoibersko genetsko žarišče in brez reprodukcijske izolacije v parapatriji. Sci. Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]
4. Montero, L.; Herrero, M.; Ibáñez, E.; Ibá, I.; Ibáñez, I.; Cifuentes, A. Ločevanje in karakterizacija florotaninov iz rjave alge Cystoseira abies-marina s celovito dvodimenzionalno tekočinsko kromatografijo. Elektroforeza 2014, 35, 1644–1651. [CrossRef] [PubMed]
5. Jégou, C.; Connan, S.; Bihanič, I.; Cérantola, S.; Guérard, F.; Stiger-Pouvreau, V. Vsebnost florotanina in pigmenta v avtohtonih vrstah Sargassaceae, ki tvorijo krošnje, ki živijo v medplimskih kamnitih bazenih v Bretanji (Francija): kakšna povezava z njihovo vertikalno porazdelitvijo in fenologijo? Mar. Drugs 2021, 19, 504. [CrossRef]
6. Guiry, MD; Guiry, GM; Sargassum, C. Agardh, 1820—AlgaeBase. Svetovna elektronska publikacija, Nacionalna univerza Irske, Galway.
7. Amador-Castro, F.; García-Cayuela, T.; Alper, HS; Rodriguez-Martinez, V.; Carrillo-Nieves, D. Valorizacija pelagične biomase Sargassum v trajnostne uporabe: trenutni trendi in izzivi. J. Okolje. Upravitelj 2021, 283, 112013. [CrossRef]
8. Daniel, SL; Kiril, B.; Leonel, P. Proizvodnja biognojil iz Ascophyllum nodosum in Sargassum muticum (Phaeophyceae). J. Oceanol. Limnol. 2019, 37, 918–927. [CrossRef]
9. Ghaffar Shahriari, A.; Mohkami, A.; Niazi, A.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Uporaba izvlečka rjavih alg (Sargassum angustifolium) za izboljšanje tolerance suše v Canoli (Brassica napus L.). Iran. J. Biotechnol. 2021, 19, e2775. [CrossRef]
10. Oliveira, JV; Alves, MM; Costa, JC Optimizacija proizvodnje bioplina pri Sargassum Sp. Uporaba načrta poskusov za oceno sočasne prebave z glicerolom in odpadnim oljem za cvrtje. Bioresour. Technol. 2015, 175, 480–485. [CrossRef]
11. Giovanna Lopresto, C.; Paletta, R.; Filippelli, P.; Galluccio, L.; de la Rosa, C.; Amaro, E.; Jáuregui-Haza, U.; Atilio de Frias, J. Invazija Sargassuma na Karibih: priložnost za obalne skupnosti za proizvodnjo bioenergije na podlagi biorafinerije – pregled. Valorizacija odpadne biomase 2022, 13, 2769–2793. [CrossRef]
12. Luis Godínez-Ortega, J.; Cuatlán-Cortés, JV; López-Bautista, JM; van Tussenbroek, BI Naravna zgodovina plavajočih vrst Sargassum (Sargasso) iz Mehike. V naravoslovju in ekologiji Mehike in Srednje Amerike; IntechOpen: London, Združeno kraljestvo, 2021.
13. Soleimani, S.; Yousefzadi, M.; Nezhad, SBM; Pozharitskaya, ON; Shikov, AN Vrednotenje frakcij, ekstrahiranih iz Polycladia Myrica: Biološke aktivnosti, UVR zaščitni učinek in stabilnost kremne formulacije na njegovi osnovi. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 1763–1777. [CrossRef]
14. Serrão, EA; Alice, LA; Brawley, SH Evolucija Fucaceae (Phaeophyceae) Infrred iz NrDNA-ITS. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [CrossRef]
15. Patarra, RF; Paiva, L.; Neto, AI; Lima, E.; Baptista, J. Hranilna vrednost izbranih makroalg. J. Appl. Phycol. 2011, 23, 205–208. [CrossRef]
16. Lopes, G.; Barbosa, M.; Vallejo, F.; Gil-Izquierdo, Á.; Andrade, PB; Valentão, P.; Pereira, DM; Ferreres, F. Profiliranje florotaninov iz Fucus spp. severne portugalske obale: kemijski pristop s HPLC-DAD-ESI/MSn in UPLC-ESI-QTOF/MS. Algal Res. 2018, 29, 113–120. [CrossRef]
17. Stansbury, J.; Saunders, P.; Winston, D. Spodbujanje zdravega delovanja ščitnice z jodom, mehurčkom, gugulom in irisom. J. Restor. med. 2013, 1, 83–90. [CrossRef]
18. Guiry, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753—AlgaeBase. Svetovna elektronska publikacija, Nacionalna univerza Irske, Galway.
19. Rasul, F.; Gupta, S.; Olas, JJ; Gečev, T.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. Priprava z izvlečkom morskih alg močno izboljša odpornost na sušo pri Arabidopsisu. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 1469. [CrossRef] [PubMed]
20. Šukla, PS; Mantin, EG; Adil, M.; Bajpai, S.; Critchley, AT; Prithiviraj, B. Biostimulansi na osnovi Ascophyllum nodosum: trajnostne aplikacije v kmetijstvu za stimulacijo rasti rastlin, odpornost na stres in obvladovanje bolezni. Spredaj. Plant Sci. 2019, 10, 655. [CrossRef] [PubMed]
22. Vodouhè, M.; Marois, J.; Guay, V.; Leblanc, N.; Weisnagel, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Obrobni vpliv rjave morske alge Ascophyllum nodosum in ekstrakta Fucus vesiculosus na presnovni in vnetni odziv pri osebah s prekomerno telesno težo in debelimi prediabetičnimi subjekti. Mar. Drugs 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]
22. Fraser, CI; Vel, M.; Nelson, WA; Macaya, EC; Hay, CH; Mccarthy, C.; Velásquez, M.; Nelson, WA; Macaya, EC; Hay, CH Biogeografski pomen plovnosti pri makroalgah: študija primera rodu Durvillaea (Phaeophyceae) južnih morskih alg, vključno z opisoma dveh novih vrst. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [CrossRef]
23. Capon, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Skene, C.; Lacey, E.; Gill, JH; Friedel, T.; Wadsworth, D.; Jobling, M.; et al. Morski nematocidi: tetrahidrofurani iz južnoavstralske rjave alge, Notheia Anomaliz. Tetrahedron 1998, 54, 2227–2242. [CrossRef]
24. Mueller, R.; Wright, JT; Bolch, CJSS Zgodovinska demografija in poti kolonizacije široko razširjene medplimske morske alge Hormosira banksii (Phaeophyceae) v jugovzhodni Avstraliji. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [CrossRef]
25. Clayton, MN Območje in filogenetski odnosi družine Seirococcaceae (Phaeophyceae) južne poloble. Bot. Mar. 1994, 37, 213–220. [CrossRef]
26. Kumar, LRG; Paul, PT; Anas, KK; Tejpal, CS; Chatterjee, NS; Anupama, TK; Matej, S.; Ravishankar, CN Florotanini – bioaktivnost in perspektive ekstrakcije. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 2173–2185. [CrossRef] [PubMed]
27. Hermund, DB; Torsteinsen, H.; Vega, J.; Figueroa, FL; Jacobsen, C. Preverjanje novih kozmecevtskih izdelkov iz rjave alge Fucus vesiculosus z antioksidativnimi in foto-zaščitnimi lastnostmi. Marine Drugs 2022, 20, 687. [CrossRef]
28. Lashika Blue Filter Sunscreen SPF 45 PA plus plus plus z rjavimi morskimi algami—30 ml.
29. Hello Sunny Essence Sun Stick Glow SPF50 plus Pa plus plus plus plus.
30. Koivikko, R.; Loponen, J.; Honkanen, T.; Jormalainen, V. Vsebnost topnih, na celično steno vezanih in eksudiranih florotaninov v rjavi algi Fucus vesiculosus, s posledicami na njihove ekološke funkcije. J. Chem. Ecol. 2005, 31, 195–212. [CrossRef]
31. Machu, L.; Misurcova, L.; Vavra Ambrozova, J.; Oršavova, J.; Mlček, J.; Sochor, J.; Jurikova, T. Vsebnost fenolov in antioksidativna zmogljivost v živilih iz alg. Molekule 2015, 20, 1118–1133. [CrossRef]
32. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Fenolne spojine in antioksidativne aktivnosti izbranih vrst morskih alg z danske obale. Food Chem. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]
33. Kim, SM; Kang, JZ; Jeon, J.-S.; Jung, Y.-J.; Kim, W.-R.; Kim, CY; Hm, B.-H. Določanje glavnih florotaninov v Eisenia bicycles z uporabo hidrofilne interakcijske kromatografije: sezonske razlike in značilnosti ekstrakcije. Food Chem. 2013, 138, 2399–2406. [CrossRef]
34. Connan, S.; Goulard, F.; Štiger, V.; Deslandes, E.; Gall, EA Medvrstne in časovne variacije ravni florotanina v skupini rjavih alg. Bot. Mar. 2004, 47, 410–416. [CrossRef]
35. Lopes, G.; Sousa, C.; Silva, LR; Pinto, E.; Andrade, PB; Bernardo, J.; Mouga, T.; Valentão, P. Ali lahko prečiščeni izvlečki florotanina predstavljajo novo farmakološko alternativo za mikrobne okužbe s povezanimi vnetnimi stanji? PLoS ONE 2012, 7, e31145. [CrossRef]
36. Obluchinskaya, ED; Pozharitskaya, ON; Zakharov, DV; Flisyuk, EV; Terninko, II.; Generalova, YE; Smekhova, IE; Shikov, AN Biokemična sestava in antioksidativne lastnosti Fucus vesiculosus iz arktične regije. Mar. Drugs 2022, 20, 193. [CrossRef]
37. Pedersen, A. Študije vsebnosti fenola in vnosa težkih kovin v fukoide. Na enajstem mednarodnem simpoziju o morskih algah. Razvoj v hidrobiologiji; Bird, CJ, Ragan, MA, ur.; Springer: Dordrecht, Nizozemska, 1984; Zvezek 22, str. 498–504.
38. Connan, S.; Stengel, DB Vplivi slanosti okolja in bakra na rjave alge: 2. Interaktivni učinki na fenol in ocena sposobnosti vezave kovin florotanina. Aquat. Toxicol. 2011, 104, 1–13. [CrossRef] [PubMed]
39. Kamiya, M.; Nishio, T.; Yokoyama, A.; Yatsuya, K.; Nishigaki, T.; Yoshikawa, S.; Ohki, K. Sezonske spremembe florotanina v vrstah Sargassacean z obale Japonskega morja. Phycol. Res. 2010, 58, 53–61. [CrossRef]
40. Ragan, MA; Jensen, A. Kvantitativne študije o fenolih rjavih alg. II. Sezonske razlike v vsebnosti polifenolov Ascophyllum nodosum (L.) Le Jol. in Fucus vesiculosus (L.). J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1978, 34, 245–258. [CrossRef]
41. Pavia, H.; Toth, GB Vpliv svetlobe in dušika na vsebnost florotanina v rjavih morskih algah Ascophyllum nodosum in Fucus vesiculosus. Hydrobiologia 2000, 440, 299–305. [CrossRef]
42. Pavia, H.; Brock, E. Zunanji dejavniki, ki vplivajo na proizvodnjo florotanina v rjavi algi Ascophyllum nodosum. Mar. Ecol. Prog. Ser. 2000, 193, 285–294. [CrossRef]
43. Tala, F.; Velásquez, M.; Mansilla, A.; Macaya, ES; Thiel, M. Latitudinalni in sezonski učinki na kratkoročno prilagajanje plavajočih vrst alg iz jugovzhodnega Pacifika. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2016, 483, 31–41. [CrossRef]
44. Sardari, RRRR; Prothmann, J.; Gregersen, O.; Turner, C.; Karlsson, EN Identifikacija florotaninov v rjavih algah, Saccharina Latissima in Ascophyllum nodosum s tekočinsko kromatografijo ultra visoke ločljivosti, povezano s tandemsko masno spektrometrijo visoke ločljivosti. Molecules 2021, 26, 43. [CrossRef]
45. Tierney, MS; Soler-Vila, A.; Rai, DK; Croft, AK; Brunton, NP; Smyth, TJ UPLC-MS profiliranje polimerov florotanina z nizko molekulsko maso v Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata in Fucus spiralis. Metabolomika 2014, 10, 524–535. [CrossRef]
46. Catarino, dr.med.; Silva, AAMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Silva, AAMS; Cardoso, SM Florotanini iz Fucus vesiculosus: Modulacija vnetnega odziva z blokiranjem signalne poti NF-KB. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 6897. [CrossRef]
47. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Izvlečki florotanina iz fukalov, označeni s HPLC-DAD-ESI-MSn: pristopi k inhibitorni zmogljivosti hialuronidaze in antioksidativnim lastnostim. Mar. Droge 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef]
48. Catarino, dr.med.; Silva, AMS; Mateus, N.; Cardoso, SM Optimizacija ekstrakcije florotaninov iz Fucus vesiculosus in ocena njihovega potenciala za preprečevanje presnovnih motenj. Mar. Drugs 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]
49. Li, Y.; Fu, X.; Duan, D.; Liu, X.; Xu, JJJ; Gao, X. Ekstrakcija in identifikacija florotaninov iz rjave alge, Sargassum fusiform (Harvey) Setchell. Mar. Drugs 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]
50. Wang, T.; Jónsdóttir, R.; Liu, H.; Gu, L.; Kristinsson, HG; Raghavan, S.; Ólafsdóttir, G. Antioksidativne zmogljivosti florotaninov, ekstrahiranih iz rjave alge Fucus vesiculosus. J. Agric. Food Chem. 2012, 60, 5874–5883. [CrossRef] [PubMed]
51. Obluchinskaya, ED; Daurtseva, AV; Pozharitskaya, ON; Flisyuk, EV; Shikov, AN Naravna globoka evtektična topila kot alternative za ekstrakcijo florotaninov iz rjavih alg. Pharm. Chem. J. 2019, 53, 243–247. [CrossRef]
52. Kadam, SU; Tiwari, BK; O'Donnell, CP; O'Donnell, CP Uporaba novih tehnologij ekstrakcije bioaktivnih snovi iz morskih alg. J. Agric. Food Chem. 2013, 61, 4667–4675. [CrossRef] [PubMed]
54. Michalak, I.; Chojnacka, K. Izvlečki alg: tehnologija in napredek. inž. Life Sci. 2014, 14, 581–591. [CrossRef]
54. Grosso, C.; Valentão, P.; Ferreres, F.; Andrade, PB; Mayer, AM Alternativne in učinkovite metode ekstrakcije spojin morskega izvora. Mar. Droge 2015, 13, 3182–3230. [CrossRef]
55. Meng, W.; Mu, T.; Sonce, H.; Garcia-Vaquero, M. Florotanini: Pregled metod ekstrakcije, strukturnih značilnosti, biološke aktivnosti, biološke uporabnosti in prihodnjih trendov. Algal Res. 2021, 60, 102484. [CrossRef]
56. Lopes, G.; Barbosa, M.; Andrade, PB; Valentão, P. Florotanini iz Fucales: potencial za nadzor nad hiperglikemijo in vaskularnimi zapleti, povezanimi s sladkorno boleznijo. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 3143–3152. [CrossRef]
57. Obluchinskaya, ED; Pozharitskaya, ON; Zakharova, LV; Daurtseva, AV; Flisyuk, EV; Shikov, AN Učinkovitost naravnih globokih evtektičnih topil za ekstrakcijo hidrofilnih in lipofilnih spojin iz Fucus vesiculosus. Molecules 2021, 26, 4198. [CrossRef]
58. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Sattari, Z.; Al-Haddad, S.; Fakhraldeen, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Encimsko podprta ekstrakcija bioaktivnih spojin iz rjavih morskih alg in karakterizacija. J. Appl. Phycol. 2020, 32, 615–629. [CrossRef]
59. Ank, G.; Antônio Perez Da Gama, B.; Pereira, RC Latitudinalna variacija vsebnosti florotanina iz rjavih morskih alg jugozahodnega Atlantika. PeerJ 2019, 7, e7379. [CrossRef] [PubMed]
60. Tabassum, MR; Xia, A.; Murphy, JD Sezonske spremembe kemične sestave in proizvodnje biometana iz rjave morske alge Ascophyllum nodosum. Bioresour. Technol. 2016, 216, 219–226. [CrossRef]
62. Hermund, DB; Heung, SY; Thomsen, BR; Akoh, CC; Jacobsen, C. Izboljšanje oksidativne stabilnosti emulzij za nego kože z antioksidantnimi izvlečki iz rjave alge Fucus vesiculosus. J. Am. Oil Chem. Soc. 2018, 95, 1509–1520. [CrossRef]
62. Ummat, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Optimizacija ultrazvočne frekvence, časa ekstrakcije in topila za predelavo polifenolov, florotaninov in s tem povezane antioksidativne aktivnosti iz rjavih morskih alg. Mar. Drugs 2020, 18, 250. [CrossRef]
63. Sumampouw, GA; Jacobsen, C.; Getachew, AT Optimizacija ekstrakcije fenolnih antioksidantov iz Fucus vesiculosus s tekočo ekstrakcijo pod pritiskom. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 1195–1207. [CrossRef]
64. Yuan, Y.; Zhang, J.; Fan, J.; Clark, J.; Shen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Ekstrakcija fenolnih spojin s pomočjo mikrovalovne pečice iz štirih ekonomskih vrst rjavih makroalg in vrednotenje njihovih antioksidativnih aktivnosti in zaviralnih učinkov na -amilazo, -glukozidazo, pankreatično lipazo in tirozinazo. Food Res. Int. 2018, 113, 288–297. [CrossRef]
65. ˇCagalj, M.; Skroza, D.; Tabanelli, G.; Özogul, F.; Šimat, V. Povečanje antioksidativne sposobnosti Padine pavonice z izbiro pravilnih metod sušenja in ekstrakcije. Procesi 2021, 9, 587. [CrossRef]
66. Amarante, SJ; Catarino, dr.med.; Marçal, C.; Silva, AMS; Ferreira, R.; Cardoso, SM Ekstrakcija florotaninov iz Fucus vesiculosus s pomočjo mikrovalovne pečice. Mar. Drugs 2020, 18, 559. [CrossRef]
67. Bian, C.; Gao, J.; Leng, X.; Sonce, C.; Dai, L.; Xu, Z. Tekočina za zadrževanje vlage in metoda za pripravo iste. Kitajski patent CN103520065A, 22. januar 2014.
68. da Silva, JRM; Alves, CMM; Pinteus, SFG; Martins, AIM; Freitas, RPF; Pedrosa, RFP Postopek pridobivanja ekstrakta, obogatenega s florotaninom, ki ima antiencimsko delovanje za uporabo v dermatologiji. Evropski patent EP3910064, 17. november 2021.
69. Prigent, A. Metoda za pridobivanje izvlečkov morskih alg. Mednarodni patent WO2015071477A1, 21. maj 2015.
70. Stiger-Poivreau, V.; Connan, S.; Gager, L.; Coiffard, L.; Couteau, C.; Decoster, S.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Izvlečki rjavih alg, vključno s fenolnimi spojinami in njihovo kozmetično uporabo. Francoski patent FR3095348A1, 30. oktober 2020.
71. Tae, HL; Lee, JM; Park, SY Postopek za pripravo encimsko obdelanih izvlečkov Hizikia fusiforme z aktivnostjo krepitve imunskega sistema in funkcionalno živilsko in farmacevtsko sestavo, ki vsebuje isto. Korejski patent KR20140032101A, 14. marec 2014.
72. Liu, X.; Yuan, W.; Sharma-shivappa, R.; Zanten, J. Van Antioksidativna aktivnost florotaninov iz rjavih alg. Int. J. Agric. Biol. inž. 2017, 10, 184–191. [CrossRef]
73. Abdelhamid, A.; Jouini, M.; Bel Haj Amor, H.; Mzoughi, Z.; Dridi, M.; Ben Said, R.; Bouraoui, A. Fitokemična analiza in ocena antioksidativnega, protivnetnega in antinociceptivnega potenciala frakcij, bogatih s florotaninom, iz treh sredozemskih rjavih morskih alg. Mar. Biotechnol. 2018, 20, 60–74. [CrossRef] [PubMed]
74. Lamuela-Raventós, RM Folin-Ciocalteujeva metoda za merjenje skupne vsebnosti fenolov in antioksidativne zmogljivosti. Pri merjenju antioksidativne aktivnosti in zmogljivosti: nedavni trendi in aplikacije; John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, ZDA, 2017; strani 107–115. ISBN 9781119135388.
75. Cotas, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonc ˛alves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Fenoli morskih alg: od ekstrakcije do aplikacij. Mar. Drugs 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]
76. Everette, JD; Bryant, QM; Green, AM; Abbey, YA; Wangila, GW; Walker, RB Temeljita študija reaktivnosti različnih razredov spojin proti reagentu Folin-Ciocalteu. J. Agric. Food Chem. 2010, 58, 8139–8144. [CrossRef] [PubMed]
77. Stern, JL; Hagerman, AE; Steinberg, PD; Winter, FC; Estes, JA Nov test za kvantificiranje florotaninov rjavih alg in primerjave s prejšnjimi metodami. J. Chem. Ecol. 1996, 22, 1273–1293. [CrossRef]
78. Steevensz, AJ; MacKinnon, SL; Hankinson, R.; Craft, C.; Connan, S.; Stengel, DB; Melanson, JE Profiliranje florotaninov v rjavih makroalgah s tekočinsko kromatografijo-masna spektrometrija visoke ločljivosti. Phytochem. Analno 2012, 23, 547–553. [CrossRef]
79. Agregán, R.; Munekata, PES; Franco, D.; Dominguez, R.; Carballo, J.; Lorenzo, JM Fenolne spojine iz treh vrst rjavih morskih alg z uporabo LC-DAD–ESI-MS/MS. Food Res. Int. 2017, 99, 979–985. [CrossRef]
80. Glombitza, KW; Schmidt, A. Trihidroksifloretoli iz rjave alge Carpophyllum angustifolium. Fitokemija 1999, 51, 1095–1100. [CrossRef]
81. Sailler, B.; Glombitza, KW Phlorethols in Fucophlorethols iz rjave alge Cystophora retroflexa. Phytochemistry 1999, 50, 869–881. [CrossRef]
82. Glombitza, KW; Keusgen, M.; Hauperich, S. Fucophlorethols iz rjavih alg Sargassum spinuligerum in Cystophora torulosa. Fitokemija 1997, 46, 1417–1422. [CrossRef]
83. Glombitza, KW; Keusgen, M. Fuhaloli in dehidroksifuhaloli iz rjave alge Sargassum spinuligerum. Fitokemija 1995, 38, 987–995. [CrossRef]
84. Glombitza, KW; Schmidt, A. Nehalogenirani in halogenirani florotanini iz rjave alge Carpophyllum angustifolium. J. Nat. Prod. 1999, 62, 1238–1240. [CrossRef]
85. Koch, M.; Gregson, RP Bromirani floretoli in nehalogenirani florotanini iz rjave alge Cystophora congested. Fitokemija 1984, 23, 2633–2637. [CrossRef]
86. Sailler, B.; Glombitza, KW Halogenirani floretoli in fukofloretoli iz rjave alge Cystophora retroflexa. Nat. Toksini 1999, 7, 57–62. [CrossRef]
87. Koivikko, R.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Visokozmogljiva tekočinska kromatografska analiza florotaninov iz rjave alge Fucus vesiculosus. Phytochem. Analno 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]
88. Corona, G.; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hotchkiss, S.; Gill, C.; Yaqoob, P.; Spencer, JPE; Rowland, I. Gastrointestinalne spremembe in biološka uporabnost florotaninov iz rjavih morskih alg in učinki na vnetne markerje. Br. J. Nutr. 2016, 115, 1240–1253. [CrossRef] [PubMed]
89. Sentkowska, A.; Pyrzynska, K. HILIC Kromatografija: Zmogljiva tehnika pri analizi polifenolov. V Polifenoli v rastlinah; Academic Press: Cambridge, MA, ZDA, 2019; strani 341–351. [CrossRef]
90. Marrubini, G.; Appelblad, P.; Maietta, M.; Papetti, A. Hidrofilna interakcijska kromatografija pri analizi živilskih matrik: posodobljen pregled. Food Chem. 2018, 257, 53–66. [CrossRef]
92. Pyrzynska, K.; Sentkowska, A. Najnovejši razvoj HPLC ločevanja fenolnih živilskih spojin. Crit. Analni Rev. Chem. 2015, 45, 41–51. [CrossRef]
93. Montero, L.; Sánchez-Camargo, AP; García-Cañas, V.; Tanniou, A.; Stiger-Pouvreau, V.; Russo, M.; Rastrelli, L.; Cifuentes, A.; Herrero, M.; Ibáñez, E. Protiproliferativna aktivnost in kemijska karakterizacija s celovito dvodimenzionalno tekočinsko kromatografijo, povezano z masno spektrometrijo florotaninov iz rjave makroalge Sargassum muticum, zbrane na severnoatlantskih obalah. J. Chromatogr. 2016, 1428, 115–125. [CrossRef]
93. Swartz, M. HPLC detektorji: kratek pregled. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2010, 33, 1130–1150. [CrossRef]
94. Vissers, AM; Caligiani, A.; Sforza, S.; Vincken, JP; Gruppen, H. Sestava florotanina Laminaria digitata. Phytochem. Analno 2017, 28, 487–495. [CrossRef]
95. Olate-Gallegos, C.; Barriga, A.; Vergara, C.; Fredes, C.; García, P.; Giménez, B.; Robert, P. Identifikacija polifenolov iz ekstraktov čilskih rjavih morskih alg z LC-DAD-ESI-MS/MS. J. Aquat. Hrana Prod. Technol. 2019, 28, 375–391. [CrossRef]
96. Catarino, dr.med.; Fernandes, I.; Oliveira, H.; Carrascal, M.; Ferreira, R.; Silva, AMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Cardoso, SM Protitumorsko delovanje florotaninov, pridobljenih iz Fucus vesiculosus, prek aktivacije apoptotičnih signalov v celičnih linijah želodca in kolorektalnega tumorja. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 7604. [CrossRef] [PubMed]
98. Audibert, L.; Fauchon, M.; Blanc, N.; Hauchard, D.; Ar Gall, E.; Gall, EA Fenolne spojine v rjavi morski algi Ascophyllum nodosum: porazdelitev in aktivnosti odstranjevanja radikalov. Phytochem. Analno 2010, 21, 399–405. [CrossRef]
98. Heffernan, N.; Brunton, NP; FitzGerald, RJ; Smyth, TJ Profiliranje molekulske mase in strukturnega izomera florotaninov, pridobljenih iz makroalg. Mar. Droge 2015, 13, 509–528. [CrossRef]
99. Kirke, DA; Smyth, TJ; Rai, DK; Kenny, O.; Stengel, DB Kemična in antioksidativna stabilnost izoliranih florotaninov z nizko molekulsko maso. Food Chem. 2017, 221, 1104–1112. [CrossRef] [PubMed]
100. Zhang, R.; Yuen, AKL; Magnusson, M.; Wright, JT; de Nys, R.; magistri, AF; Maschmeyer, T. Primerjalna ocena aktivnosti in strukture florotaninov iz rjave morske alge Carpophyllum flexuosum. Algal Res. 2018, 29, 130–141. [CrossRef]
101. Allwood, JW; Evans, H.; Austin, C.; McDougall, GJ Ekstrakcija, obogatitev in karakterizacija florotaninov in sorodnih fenolov iz rjave morske alge Ascophyllum nodosum na osnovi LC-MSn. Mar. Drugs 2020, 18, 448. [CrossRef]
102. Koivikko, R.; Eränen, JK; Loponen, J.; Jormalainen, V. Variacija florotaninov med tremi populacijami Fucus vesiculosus, kot sta jih razkrila HPLC in kolorimetrična kvantifikacija. J. Chem. Ecol. 2008, 34, 57–64. [CrossRef]
103. Kirke, DA; Rai, DK; Smyth, TJ; Stengel, DB Ocena časovne variacije v profilih florotanina z nizko molekulsko maso v štirih medplimskih rjavih makroalgah. Algal Res. 2019, 41, 101550. [CrossRef]
104. Parys, S.; Kehraus, S.; Krick, A.; Glombitza, KW; Karmeli, S.; Klimo, K.; Gerhäuser, C.; König, GM In vitro kemopreventivni potencial fukofloretolov iz rjave alge Fucus vesiculosus L. z antioksidativnim delovanjem in zaviranjem izbranih encimov citokroma P450. Fitokemija 2010, 71, 221–229. [CrossRef]
105. Hermund, DB; Plaza, M.; Turner, C.; Jónsdóttir, R.; Kristinsson, HG; Jacobsen, C.; Nielsen, KF Strukturno odvisna antioksidativna zmogljivost florotaninov iz islandskega Fucus vesiculosus z UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS. Food Chem. 2018, 240, 904–909. [CrossRef] [PubMed]
106. Ovčinnikov, DV; Bogolicin, KG; Družinina, AS; Kaplitsin, PA; Paršina, AE; Pikovskoj, II; Khoroshev, OY; Turova, PN; Stavrianidi, AN; Shpigun, OA Študija polifenolnih komponent v izvlečkih arktičnih rjavih alg vrste Fucus vesiculosus s tekočinsko kromatografijo in masno spektrometrijo. J. Anal. Chem. 2020, 75, 633–639. [CrossRef]
107. Kellogg, J.; Grace, MH; Lila, MA Florotanini iz aljaških morskih alg zavirajo aktivnost karbolitičnega encima. Mar. Droge 2014, 12, 5277–5294. [CrossRef] [PubMed]
108. Kellogg, J.; Esposito, D.; Grace, MH; Komarnytsky, S.; Lila, MA Aljaške morske alge zmanjšajo vnetje v makrofagih RAW 264.7 in zmanjšajo kopičenje lipidov v adipocitih 3T3-L1. J. Funk. Živila 2015, 15, 396–407. [CrossRef]
109. Baldrick, FR; McFadden, K.; Ibarš, M.; Sung, C.; Moffatt, T.; Megarry, K.; Thomas, K.; Mitchell, P.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; et al. Vpliv (poli)fenolnega izvlečka iz rjave alge Ascophyllum nodosum na poškodbe DNK in antioksidativno aktivnost pri prekomerno težki ali debeli populaciji: randomizirano kontrolirano preskušanje. Am. J. Clin. Nutr. 2018, 108, 688–700. [CrossRef]
110. Vázquez-Rodríguez, B.; Gutiérrez-Uribe, JA; Antunes-Ricardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, LE Ultrazvočno podprta ekstrakcija florotaninov in polisaharidov iz Silvetia compressa (Phaeophyceae). J. Appl. Phycol. 2020, 32, 1441–1453. [CrossRef]
111. Keusgen, M.; Glombitza, KW Floretoli, fuhaloli in njihovi derivati iz rjave alge Sargassum spinuligerum. Fitokemija 1995, 38, 975–985. [CrossRef]
112. Keusgen, M.; Glombitza, KW Pseudofuhaloli iz rjave alge Sargassum spinuligerum. Fitokemija 1997, 46, 1403–1415. [CrossRef]
113. Vijayan, R.; Chitra, L.; Penislusshiyan, S.; Palvannan, T. Raziskovanje bioaktivne frakcije Sargassum wightii: In vitro razjasnitev zaviranja angiotenzin-i-pretvorbenega encima in antioksidativnega potenciala. Int. J. Food Prop. 2018, 21, 674–684. [CrossRef]
114. Kord, A.; Foudil-Cherif, Y.; Amiali, M.; Boumechhour, A.; Benfares, R. Sestava florotaninov, zmogljivost čiščenja radikalov in redukcijska moč fenolov iz rjave alge Cystoseira sauvageauana. J. Aquat. Hrana Prod. Technol. 2021, 30, 426–438. [CrossRef]
115. Gheda, S.; Naby, MA; Mohamed, T.; Pereira, L.; Khamis, A. Antidiabetična in antioksidativna aktivnost florotaninov, ekstrahiranih iz rjave morske alge Cystoseira compressa pri diabetičnih podganah, ki jih povzroča streptozotocin. Okolje. Sci. Onesnaževanje. Res. 2021, 28, 22886–22901. [CrossRef] [PubMed]
116. Trifan, A.; Vasincu, A.; Luca, SV; Neophytou, C.; Wolfram, E.; Opitz, SEW; Sava, D.; Bučur, L.; Cioroiu, BI; Miron, A.; et al. Razkrivanje potenciala morskih alg s črnomorske obale Romunije kot virov bioaktivnih spojin. I. del: Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Food Chem. Toxicol. 2019, 134, 110820. [CrossRef] [PubMed]
117. Gonçalves-Fernández, C.; Sineiro, J.; Moreira, R.; Gualillo, O. Ekstrakcija in karakterizacija s florotaninom obogatenih frakcij iz atlantskih morskih alg Bifurcaria bifurcata in vrednotenje njihove citotoksične aktivnosti v mišji celični liniji. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 2573–2583. [CrossRef]
118. Catarino, dr.med.; Alves-Silva, JM; Falcão, SI; Vilas-Boas, M.; Jordão, M.; Cardoso, SM Kromatografija kot orodje za identifikacijo bioaktivnih spojin v izdelkih čebel botaničnega izvora. V kemiji, biologiji in potencialni uporabi proizvodov rastlinskega izvora čebel; Cardoso, SM, Silva, AMS, ur.; Bentham Science Publishers: Sharjah, Združeni arabski emirati, 2016; strani 89–149. ISBN 9781681082370.
119. Ford, L.; Teodoridu, K.; Sheldrake, GN; Walsh, PJ Kritični pregled analitskih metod, uporabljenih za kemijsko karakterizacijo in kvantifikacijo spojin florotanina v rjavih morskih algah. Phytochem. Analno 2019, 30, 587–599. [CrossRef] [PubMed]
120. Isaza Martínez, JH; Torres Castañeda, HG Priprava in kromatografska analiza florotaninov. J. Chromatogr. Sci. 2013, 51, 825–838. [CrossRef]
121. Rajauria, G. Optimizacija in validacija metode HPLC z reverzno fazo za kvalitativno in kvantitativno oceno polifenolov v morskih algah. J. Pharm. Biomed. Analno 2018, 148, 230–237. [CrossRef]
122. Kumar, Y.; Singhal, S.; Tarafdar, A.; Pharande, A.; Ganesan, M.; Badgujar, PC Ultrazvočno podprta ekstrakcija izbranih užitnih makroalg: učinek na antioksidativno aktivnost in kvantitativno oceno polifenolov s tekočinsko kromatografijo s tandemsko masno spektrometrijo (LC-MS/MS). Algal Res. 2020, 52, 102114. [CrossRef]
123. Catarino, DM; Silva, MA; Cardoso, MS Fucaceae: Vir bioaktivnih florotaninov. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 1327. [CrossRef]
124. Pantidos, N.; Boath, A.; Lund, V.; Conner, S.; McDougall, GJ Fenolno bogati izvlečki iz užitnih morskih alg, Ascophyllum nodosum, zavirajo -amilazo in -glukozidazo: potencialni antihiperglikemični učinki. J. Funk. Živila 2014, 10, 201–209. [CrossRef]
125. Karthik, R.; Manigandan, V.; Sheeba, R.; Saravanan, R.; Rajesh, PR Strukturna karakterizacija in primerjalne biomedicinske lastnosti floroglucinola iz indijskih rjavih morskih alg. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3561–3573. [CrossRef]
126. Parys, S.; Kehraus, S.; Pete, R.; Küpper, FC; Glombitza, K.-W.; König, GM Sezonske variacije polifenolov v Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae). EUR. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [CrossRef]
127. Shrestha, S.; Zhang, W.; Smid, SD Florotanini: pregled biosinteze, kemije in bioaktivnosti. Food Biosci. 2021, 39, 100832. [CrossRef]
128. Erpel, F.; Mateos, R.; Pérez-Jiménez, J.; Pérez-Correa, JR Florotanini: od izolacije in strukturne karakterizacije do ocene njihovega antidiabetičnega in protirakavega potenciala. Food Res. Int. 2020, 137, 109589. [CrossRef] [PubMed]
129. Jégou, C.; Kervarec, N.; Cérantola, S.; Bihanič, I.; Stiger-Pouvreau, V. Uporaba NMR za kvantificiranje florotaninov: primer Cystoseira tamariscifolia, rjave makroalge, ki proizvaja floroglucinol, v Bretanji (Francija). Talanta 2015, 135, 1–6. [CrossRef]
130. Jégou, C.; Culioli, G.; Kervarec, N.; Simon, G.; Stiger-Pouvreau, V. Analitske metode LC/ESI-MSn in 1H HR-MAS NMR kot uporabna taksonomska orodja znotraj rodu Cystoseira C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae). Talanta 2010, 83, 613–622. [CrossRef]
131. Ford, L.; Stratakos, AC; Teodoridu, K.; Dick, JTA; Sheldrake, GN; Linton, M.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Polifenoli iz rjavih morskih alg kot potencialno protimikrobno sredstvo v krmi za živali. ACS Omega 2020, 5, 9093–9103. [CrossRef]
132. Glombitza, KW; Rosener, HU; Müller, D. Bifuhalol und Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Fitokemija 1975, 14, 1115–1116. [CrossRef]
133. Jacobsen, C.; Sørensen, A.-DM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, DB Karakterizacija in uporaba novih antioksidantov iz morskih alg. Annu. Rev. Food Sci. Technol. 2019, 10, 541–568. [CrossRef]
134. Mateos, R.; Pérez-Correa, JR; Domínguez, H. Bioaktivne lastnosti morskih fenolov. Mar. Drugs 2020, 18, 501. [CrossRef]
135. Glombitza, KW; Hauperich, S.; Keusgen, M. Florotanini iz rjavih alg Cystophora torulosa in Sargassum spinuligerum. Nat. Toksini 1997, 5, 58–63. [CrossRef]
136. Koch, M.; Glombitza, KW; Rösener, HU Polihidroksifenil etri iz Bifurcaria bifurcata. Fitokemija 1981, 20, 1373–1379. [CrossRef]
137. Cérantola, S.; Breton, F.; Gall, EA; Deslandes, E. Sočasno pojavljanje in antioksidativne aktivnosti razredov Fucol in Fucophlorethol polimernih fenolov v Fucus spiralis. Bot. Mar. 2006, 49, 347–351. [CrossRef]
138. McInnes, AG; Ragan, MA; Smith, DG; Walter, JA Polifloroglucinoli z visoko molekulsko maso morske rjave alge Fucus vesiculosus L. 1H in 13C jedrska magnetna resonančna spektroskopija. Lahko. J. Chem. 1985, 63, 304–313. [CrossRef]
139. le Lann, K.; Surget, G.; Couteau, C.; Coiffard, L.; Cérantola, S.; Gaillard, F.; Larnicol, M.; Zubia, M.; Guérard, F.; Poupart, N.; et al. Zaščita pred soncem, antioksidant in baktericidna zmogljivost florotaninov iz rjave makroalge Halidrys siliquosa. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3547–3559. [CrossRef]






