5.2. Analiza eteričnih olj

Izolacijo eteričnih olj s hidrodestilacijo smo izvedli v aparatu tipa Clevenger 3 ure [64].

Glikozid cistanche lahko tudi poveča aktivnost SOD v srčnem in jetrnem tkivu ter znatno zmanjša vsebnost lipofuscina in MDA v vsakem tkivu, učinkovito lovi različne reaktivne kisikove radikale (OH-, H₂O₂ itd.) in ščiti pred povzročeno poškodbo DNK z OH-radikali. Cistanche feniletanoidni glikozidi imajo močno sposobnost lovljenja prostih radikalov, večjo redukcijsko sposobnost kot vitamin C, izboljšajo aktivnost SOD v suspenziji semenčic, zmanjšajo vsebnost MDA in imajo določen zaščitni učinek na delovanje membrane semenčic. Cistanche polisaharidi lahko povečajo aktivnost SOD in GSH-Px v eritrocitih in pljučnem tkivu eksperimentalno starajočih se miši, ki jih povzroča D-galaktoza, pa tudi zmanjšajo vsebnost MDA in kolagena v pljučih in plazmi ter povečajo vsebnost elastina. dober čistilni učinek na DPPH, podaljša čas hipoksije pri starajočih se miših, izboljša aktivnost SOD v serumu in upočasni fiziološko degeneracijo pljuč pri eksperimentalno starajočih se miših. Pri celični morfološki degeneraciji so poskusi pokazali, da ima Cistanche dobro antioksidativno sposobnost in ima potencial, da postane zdravilo za preprečevanje in zdravljenje bolezni staranja kože. Hkrati ima ehinakozid v Cistanche pomembno sposobnost čiščenja prostih radikalov DPPH in lahko lovi reaktivne kisikove vrste, preprečuje razgradnjo kolagena, ki jo povzročijo prosti radikali, in ima tudi dober učinek popravljanja poškodb anionov prostih radikalov timina.

Kliknite na dodatek Cistanche Tubulosa

【Za več informacij: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Analize olj so bile izvedene s plinsko kromatografijo (GC) in plinsko kromatografijo/masno spektrometrijo (GC/MS). GC analize so bile izvedene s plinskim kromatografom (Agilent 7890A, Palo Alto, CA, ZDA), opremljenim s 30 m × 0.25 mm id z 0,25 µm stacionarno debelina filma HP-5 kapilarna kolona (Agilent J&W, Santa Clara, CA, ZDA). Uporabili smo naslednji temperaturni program: od 60 ◦C do 246 ◦C s hitrostjo 3 ◦C min−1 in nato vzdrževali pri 246 ◦C 20 minut (skupni čas analize 82 minut). Drugi delovni pogoji so bili naslednji: nosilni plin helij (čistost večja ali enaka 99,9999 odstotka —Air Liquide, Milano, Italija); hitrost pretoka, 1,0 mL.min−1; temperatura injektorja, 250 ◦C; temperatura detektorja, 300 ◦C. Injiciranje 1 µL razredčenega vzorca (1:100 v n-heksanu, m/m) je bilo izvedeno z razmerjem delitve 1:20 z uporabo samodejnega vzorčevalnika (Agilent, model 7683B, Santa Clara, CA, ZDA).

Analize GC-MS so bile izvedene s plinskim kromatografom (Agilent 6890N, Santa Clara, CA, ZDA), opremljenim z notranjim premerom 30 m × 0,25 mm z 0,25 µm stacionarno debelino filma HP{ {7}}ms kapilarna kolona (Agilent J&W, Santa Clara, CA, ZDA), povezana z masnim selektivnim detektorjem z napravo za elektronsko ionizacijo, EI, in kvadrupolnim analizatorjem (Agilent 5973, Santa Clara, CA, ZDA). Temperaturni program in kromatografski delovni pogoji (razen detektorja) so bili enaki kot za GC-FID. Pogoji MS so bili naslednji: temperatura prenosne linije MS 240 ◦C; EI temperatura ionskega vira, 200 ◦C z ionizacijsko energijo 70 eV; kvadrupolna temperatura 150 ◦C; hitrost skeniranja, 3,2 skeniranja.s−1 pri območju skeniranja m/z, (30 do 480). Za obdelavo in obdelavo kromatogramov in masnih spektrov je bila uporabljena programska oprema MSD ChemStation (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, ZDA). Spojine so bile identificirane s primerjavo njihovih masnih spektrov s podatki knjižnice NIST02 sistema GC/MS in knjižnic Adams [32,33]. Rezultati so bili nadalje potrjeni s primerjavo z vrstnim redom elucije spojine z njihovimi retencijskimi indeksi na semipolarnih fazah, o katerih poroča literatura [32]. Retenzijske indekse komponent smo določili glede na retenzijske čase serije n-alkanov (dve standardni mešanici C8–C20 in C21–C40) z linearno interpolacijo [65]. Odstotek posameznih komponent je bil izračunan na podlagi GC površin vrhov brez korekcije odzivnega faktorja FID. Rezultati so prikazani kot odstotek posameznih vrhov ± standardna deviacija dveh neodvisnih kromatografskih serij.

5.3. Protiglivično delovanje

Protiglivično delovanje eteričnega olja S. cacaliifolia smo ocenili proti nitastim glivam in kvasovkam. Trije klinični sevi dermatofitov, izolirani iz nohtov in kože (Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 in Microsporum canis FF1), in štirje sevi tipa dermatofitov iz Colección Espanõla de Cultivos Tipo (T. mentagrophytes var. interdigital CECT 2958, T. rubrum CECT 2794, T. verrucosum CECT 2992 in M. gypseum CECT 2908), en sev tipa Cryptococcus neoformans (C. neoformans YPO186), dva klinična seva Candide, izolirana iz ponavljajočih se primerov vulvovaginalnih (C. krusei LF33, C. guillermondii MAT23) in trije sevi vrste Candida (C. albicans ATCC 10231, C. tropicalis YPO128 in C. paraphimosis ATCC 90018). Vsi sevi so bili shranjeni v Sabouraud dekstrozni bujon z 20 odstotki glicerola pri –80 ◦C in subkulturirani v Sabouraudovem dekstroznem agarju (SDA) ali krompirjevem dekstroznem agarju (PDA) pred vsakim testom, da se zagotovijo optimalni rastni pogoji in čistost.

Za določitev minimalnih inhibitornih koncentracij (MIC) in minimalne letalne koncentracije (MLC) olja v skladu z referenčnim protokolom M38-A2 [66] inštituta za klinične in laboratorijske standarde (CLSI) [66] je bila uporabljena metoda mikrodilucijskega bujona. M27-A3 [67] za nitaste glive oziroma kvasovke. MIC je bila najnižja koncentracija, pri kateri ni bilo opaziti rasti v inokuliranih epruvetah, medtem ko je bila MLC najnižja koncentracija, pri kateri ni bilo opaziti rasti po inokulaciji v SDA od vseh negativnih epruvet. Vključena sta bila tudi negativna (necepljeno gojišče) in pozitivna (cepljeno gojišče z 1 odstotkom DMSO) kontrola.

5.4. Protivnetno delovanje

RAW 264.7, celična linija mišjih levkemičnih makrofagov, pridobljena iz ameriške zbirke tipskih kultur (ATCC TIB-71), je bila kultivirana, kot je prej poročala naša skupina [22].

Proizvodnja NO je bila izmerjena s kvantificiranjem kopičenja nitritov v supernatantih kulture z uporabo Griessovega reagenta [68]. Celice (0.6 × 106 celic/vdolbino) smo gojili v 48-ploščih za kulturo vdolbinic. Po stabilizaciji čez noč so bili makrofagi predhodno obdelani 1 uro z eteričnim oljem (0.08–1,25 µL/mL), razredčenim v DMSO, in nato aktivirani s 50 ng/mL LPS za 24 ur Izvedene so bile pozitivne (z LPS stimulirani makrofagi) in negativne kontrole (neobdelani makrofagi). Po tej inkubacijski dobi enake količine supernatantov kulture in Griessovega reagenta [1:1 0,1 odstotka (m/v) N-(1-naftil) etilendiamin dihidroklorida in 1 odstotka (m/v) sulfanilamida, ki vsebuje 5 odstotkov ( w/v) H3PO4] zmešali in inkubirali 30 minut v temi. Absorbanca pri 550 nm je bila registrirana v avtomatiziranem bralniku plošč (Agilent, Santa Clara, CA, ZDA) in koncentracija nitrita je bila določena iz standardne krivulje natrijevega nitrita. Naša skupina je že dokazala, da DMSO pri največji uporabljeni koncentraciji (0,4 odstotka) nima protivnetnih in citotoksičnih učinkov (podatki niso prikazani).

RAW 264.7 (1,2 × 106 celic/vdolbinico) smo gojili v 6-ploščah z vdolbinicami in pustili, da se stabilizira 12 ur. Nato smo celice inkubirali z eteričnim oljem (0,64 µL/mL) 1 uro, čemur je sledila 24-urna aktivacija LPS (50 ng/mL). Upoštevali smo negativno kontrolo (neobdelane celice) in pozitivno kontrolo (celice, obdelane samo z LPS). Celični lizati so bili pripravljeni, kot so predhodno opisali Zuzarte et al. [22].

Western blot analiza je bila izvedena za merjenje ravni beljakovin inducibilne sintaze dušikovega oksida (iNOS) in ciklooksigenaze{{0}} (COX-2). Proteine ​​smo ločili z elektroforezo na SDS-poliakrilamidu 10 odstotkov (v/v), pri 130 V za 1, 5 ure in prenesli na membrane iz poliviniliden fluorida (predhodno aktivirane z metanolom) pri 400 mA za 3 ure. Po blokiranju nespecifičnih IgG s 5 odstotki (m/v) mleka v TBS-T 1 uro pri sobni temperaturi so bile membrane inkubirane s specifičnimi protitelesi proti iNOS (1:500; R & D Systems) ali COX{{15} } (1:5000; Abcam, Cambridge, Združeno kraljestvo) čez noč pri 4 ◦C. Nato smo membrane 30 minut izpirali s TBS-T (10 minut, 3-krat) in 1 uro inkubirali pri sobni temperaturi s sekundarnimi protitelesi (1:40, 000; Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX , ZDA), konjugirano s hrenovo peroksidazo. Imunokomplekse smo odkrili s kemiluminiscenčnim skenerjem (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, ZDA). Membrane so bile testirane s protitelesom proti tubulinu (1:20.000; Sigma), da bi zagotovili, da je bila naložena enakovredna količina beljakovin. Kvantifikacija beljakovin je bila izvedena z uporabo ImageLab različice 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, ZDA).

5.5. Selitev celic

NIH 3T3, celična linija mišjih embrionalnih fibroblastov (ATCC CRL-1658), je bila kultivirana, kot je predhodno opisano v naši skupini [69].

5.5.2. Test celične migracije

Migracija celic je bila izvedena z uporabo testa s praskami, kot so poročali Martinotti in sodelavci [70] z rahlimi spremembami. Na kratko, fibroblasti NIH 3T3 so bili zasejani pri 2,5 × 105 celic/mL v 12-plošče z jamicami. Po 24 urah rasti je bila izvedena praska v celičnem monosloju z uporabo 20–200 µL konice pipete. Ločene celice smo odstranili s spiranjem celic s sterilnim PBS 1x. Vsem ploščam smo dodali DMEM z 2 odstotki seruma v prisotnosti ali odsotnosti eteričnega olja. Z uporabo mikroskopa s faznim dogovorom so bile slike pridobljene 0, 12 in 18 ur po praskanju, površina rane pa je bila izmerjena s programsko opremo ImageJ/Fiji. Predstavljeni rezultati so bili pridobljeni z uporabo naslednje enačbe

5.6. Viabilnost celic

Vpliv različnih koncentracij eteričnega olja na sposobnost preživetja tako makrofagov kot fibroblastov smo izvedli s testom redukcije resazurina. Na kratko, makrofage ({{0}}.6 × 106 celic/mL) ali fibroblaste (1,25 × 105 celic/mL) smo zasejali v 48-plošče z vdolbinicami. Po nočni stabilizaciji smo za 24 ur dodajali različne koncentracije eteričnega olja (0,08–1,25 µL/mL), razredčenega v DMSO. Na koncu poskusa smo medij odstranili in dodali svež medij, ki je vseboval resazurin (1:10), za 1 uro ali 4 ure za makrofage oziroma fibroblaste. Absorbanca pri 570 nm z referenčnim filtrom 620 nm je bila registrirana v avtomatiziranem bralniku plošč (Agilent, Santa Clara, CA, ZDA). Viabilnost celic je bila določena z naslednjo enačbo:

kjer je AbsExp absorbanca (razlika med 570 in 620 nm) v različnih eksperimentalnih pogojih, AbsCT pa absorbanca v kontrolnih celicah (brez eteričnega olja).

5.7. Z etopozidom povzročeno staranje 

Staranje je bilo ocenjeno z uporabo komercialno dostopnega kompleta za barvanje z beta-galaktozidazo v skladu s protokolom proizvajalca (tehnologija celične signalizacije). Na kratko, 2,5 × 104 fibroblastov je bilo posejanih v 12-plošče z vdolbinicami in omogočeno adherenco čez noč. Nato smo inducirali staranje z inkubacijo celic z 12,5 µM etopozida 24 ur. Etopozid smo odstranili in celice sprali s PBS 1x. Nato smo celice pustili obnoviti 72 ur v DMEM v odsotnosti ali prisotnosti eteričnega olja S. cacaliifolia in dnevno ocenjevali spremembe v morfologiji. Po 72 urah smo celice fiksirali 15 minut z uporabo 1x raztopine za fiksiranje (priloženo v komercialnem kompletu), čemur je sledilo izpiranje s PBS in inkubirali čez noč z raztopino za barvanje z beta-galaktozidazo v suhem inkubatorju pri 37 °C brez dovoda CO2. Različna polja smo si ogledali pod mikroskopom za razvoj modre barve in jih fotografirali za slikovno analizo (8 slik na stanje). Izrazito modro obarvanje je kazalo na aktivnost beta-galaktozidaze. Kvantitativna analiza je bila izvedena z uporabo ImageJ in izračunan je bil odstotek starajočih se celic glede na celotno število celic.

5.8. Statistična analiza

Rezultati so predstavljeni kot povprečne vrednosti ± SEM (standardna napaka povprečja) iz vsaj treh neodvisnih poskusov, izvedenih v dvojniku. Statistični pomen za teste protivnetnega delovanja, viabilnosti celic in staranja so določili z uporabo enosmerne analize variance (ANOVA), ki ji je sledil Dunnettov post-hoc test z uporabo GraphPad Prism različice 9.3.0 (GraphPad Software, San Diego, CA, ZDA). Za teste celične migracije je bil statistični pomen določen z dvosmerno ANOVA, ki ji je sledil Sydákov test večkratne primerjave. Šteje se, da p-vrednost < 0.05 predstavlja pomembne razlike.

Avtorski prispevki:Konceptualizacija, LS in AM; validacija, AS, MJG, MTC in SP; formalna analiza, JMA-S., MJG, AP in DF; preiskava, JMA-S., AM in AP; viri, AM, EC, MTC in LS; urejanje podatkov, AP; pisanje—priprava izvirnega osnutka, JMA-S., AP in AM; pisanje—pregled in urejanje, MTC, LS in AM; vizualizacija, JMA-S.; nadzor, LS in AM; projektna administracija, LS; pridobivanje sredstev, LS in MTC Vsi avtorji so prebrali in se strinjali z objavljeno različico rokopisa.

Financiranje:To delo so financirali COMPETE 2020—Operativni program za konkurenčnost in internacionalizacijo ter portugalski nacionalni skladi prek FCT—Fundação para a Ciência ea Tecnologia v okviru projektov UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 in LA/P/0058/2020.

Izjava o razpoložljivosti podatkov:Podatki bodo na voljo na zahtevo.

Nasprotja interesov:Avtorji izjavljajo, da ni navzkrižja interesov.

Reference

1. Bongomin, F.; Gago, S.; Oladele, R.; Denning, D. Globalna in večnacionalna razširjenost glivičnih bolezni – natančnost ocene. J. Fungi 2017, 3, 57. [CrossRef] [PubMed]

2. Campoy, S.; Adrio, JL Antimikotiki. Biochem. Pharm. 2017, 133, 86–96. [CrossRef] [PubMed]

3. Gupta, AK; Cooper, EA Posodobitev protiglivične terapije dermatofitoze. Mycopathologia 2008, 166, 353–367. [CrossRef]

4. Matiz, C.; Friedlander, SF Okužbe in abscesi podkožnega tkiva. V Načela in praksa pediatričnih nalezljivih bolezni; Elsevier: Amsterdam, Nizozemska, 2012; str. 454–462.e3.

5. de Oliveira, CB; Vasconcellos, C.; Sakai-Valente, NY; Sotto, MN; Luiz, FG; Belda Júnior, W.; de Sousa, MdGT; Benard, G.; Criado, PR Toll-like Receptors (TLR) 2 in 4 Izražanje keratinocitov pri bolnikih z lokalizirano in razširjeno dermatofitozo. Rev. Inst. med. Trop. Sao Paulo 2015, 57, 57–61. [CrossRef] [PubMed]

6. Celestrino, GA; Reis, APC; Criado, PR; Benard, G.; Sousa, MGT Trichophyton Rubrum izzove fagocitne in pro-vnetne odzive v človeških monocitih prek Toll-like receptorja 2. Spredaj. Microbiol. 2019, 10, 2589. [CrossRef]

7. Sun, S.-C. Nekanonična pot NF-B pri imunosti in vnetju. Nat. Rev. Immunol. 2017, 17, 545–558. [CrossRef] [PubMed]

8. Šarma, A.; Gupta, S. Zaščitna manifestacija herbonanocevtikov kot protiglivičnih sredstev: možen kandidat za zdravilo za dermatofitno okužbo. Health Sci. Rep. 2022, 5. [CrossRef]

9. Guo, S.; DiPietro, LA Dejavniki, ki vplivajo na celjenje ran. J. Dent. Res. 2010, 89, 219–229. [CrossRef]

10. Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Canhoto, J.; Vale-Silva, L.; Silva, MJ; Pinto, E.; Salgueiro, L. Kemična sestava in protiglivično delovanje eteričnih olj Lavandula Viridis LHér. J. Med. Microbiol. 2011, 60, 612–618. [CrossRef]

11. Martinez-Rossi, NM; Bitencourt, TA; Peres, NTA; Lang, EAS; Gomes, EV; Quaresemin, NR; Martins, poslanec; Lopes, L.; Rossi, A. Odpornost dermatofitov na protiglivična zdravila: Mehanizmi in prospekt. Spredaj. Microbiol. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

12. Mourad, A.; Perfect, JR Vojna proti kriptokokozi: Pregled protiglivičnega arzenala. mem. Inst. Oswaldo. Cruz. 2018, 113, e170391. [CrossRef] [PubMed]

13. McCarthy, MW; Kontoyiannis, DP; Cornely, OA; Popoln, JR; Walsh, TJ Nova sredstva in tarče zdravil za spopadanje z izzivi odpornih gliv. J. Infect. Dis. 2017, 216, S474–S483. [CrossRef] [PubMed]

14. Vonkeman, HE; van de Laar, MAFJ Nesteroidna protivnetna zdravila: neželeni učinki in njihovo preprečevanje. Semin. artritis Rheum. 2010, 39, 294–312. [CrossRef] [PubMed]

15. Bakkali, F.; Averbeck, S.; Averbeck, D.; Idaomar, M. Pregled bioloških učinkov eteričnih olj. Food Chem. Toxicol. 2008, 46, 446–475. [CrossRef] [PubMed]

16. Christaki, E.; Bonos, E.; Giannenas, I.; Florou-Paneri, P. Aromatične rastline kot vir bioaktivnih spojin. Kmetijstvo 2012, 2, 228–243. [CrossRef]

17. Edris, AE Farmacevtski in terapevtski potenciali eteričnih olj in njihovih hlapnih sestavin: pregled. fitoter. Res. 2007, 21, 308–323. [CrossRef] [PubMed]

18. Pinto, E.; Vale-Silva, L.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. Protiglivično delovanje eteričnega olja nageljnovih žbic iz Syzygium Aromaticum na vrstah Candida, Aspergillus in dermatophyte. J. Med. Microbiol. 2009, 58, 1454–1462. [CrossRef]

19. Pinto, E.; Hrimpeng, K.; Lopes, G.; Vaz, S.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. Protiglivično delovanje eteričnega olja Ferulago Capillaris proti vrstam Candida, Cryptococcus, Aspergillus in Dermatophyte. EUR. J. Clin. Microbiol. Okužiti. Dis. 2013, 32, 1311–1320. [CrossRef]

20. Pinto, E.; Pina-Vaz, C.; Salgueiro, L.; Gonçalves, MJ; Costa-de-Oliveira, S.; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Ro-drigues, A.; Martinezde-Oliveira, J. Protiglivično delovanje eteričnega olja Thymus Pulegioides na vrste Can-dida, Aspergillus in dermatophyte. J. Med. Microbiol. 2006, 55, 1367–1373. [CrossRef]

21. Valente, J.; Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Lopes, MC; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Protiglivične, antioksidativne in protivnetne aktivnosti eteričnega olja Oenanthe Crocata L. Food Chem. Toxicol. 2013, 62, 349–354. [CrossRef] [PubMed]

22. Zuzarte, M.; Alves-Silva, JM; Alves, M.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Nova spoznanja o protivnetnem potencialu in varnostnem profilu eteričnih olj Thymus Carnosus in Thymus Camphoratus ter njunih glavnih spojin. J. Ethnopharmacol. 2018, 225, 10–17. [CrossRef]

23. Walker, JB; Sytsma, KJ; Treutlein, J.; Wink, M. Salvia (Lamiaceae) ni monofiletična: Posledice za sistematiko, sevanje in ekološko specializacijo Salvia in Tribe Mentheae. Am. J. Bot. 2004, 91, 1115–1125. [CrossRef] [PubMed]

24. Su, C.-Y.; Ming, Q.-L.; Rahman, K.; Han, T.; Qin, L.-P. Salvia Miltiorrhiza: uporaba v tradicionalni medicini, kemija in farmakologija. brada. J. Nat. med. 2015, 13, 163–182. [CrossRef] [PubMed]

25. Ghorbani, A.; Esmaeilizadeh, M. Farmakološke lastnosti Salvia Officinalis in njenih sestavin. J. Tradicija. Dopolnjujejo. med. 2017, 7, 433–440. [CrossRef]

26. Afonso, AF; Alves-Silva, JM; Pereira, OR; Cardoso, SM Koristni učinki rastlin Salvia: korelacija z bioaktivnimi komponentami. V najnovejšem napredku zdravilnih rastlin, zvezek 44: Fitoterapija III; Govil, JN, Pathak, M., ur.; Studium Press: New Delhi, Indija, 2016; strani 161–198.

27. Salimikia, I.; Aryanpour, M.; Abdollahi, M.; Abdolghaffari, A.; Samadi, N.; Monsef-Esfahani, H. Fitokemijski in celjenje ran učinki metanolnega ekstrakta Salvia Multicaulis Vahl. v Ratu. Planta Med. 2016, 81, S1–S381. [CrossRef]

28. Gali-Muhtasib, H.; Hilan, C.; Khater, C. Tradicionalna uporaba Salvia Libanotica (vzhodnosredozemski žajbelj) in učinki njegovih eteričnih olj. J. Ethnopharmacol. 2000, 71, 513–520. [CrossRef] [PubMed]

29. Hamidpour, M.; Hamidpour, R.; Hamidpour, S.; Shahlari, M. Kemija, farmakologija in zdravilne lastnosti žajblja (Salvia) za preprečevanje in zdravljenje bolezni, kot so debelost, sladkorna bolezen, depresija, demenca, lupus, avtizem, bolezni srca in rak. J. Tradicija. Dopolnjujejo. med. 2014, 4, 82–88. [CrossRef]

30. Askari, SF; Avan, R.; Tayarani-Najaran, Z.; Sahebkar, A.; Eghbali, S. Iranske vrste salvije: fitokemična in farmakološka posodobitev. Phytochemistry 2021, 183, 112619. [CrossRef]

31. Davidse, G.; Sousa Sánchez, M.; Knapp, SD; Chian Cabrera, F. Rubiaceae a Verbenaceae. 4 (2): I–Xvi, 1–533. V Flora Mesoamericana; Davidse, G., Sousa Sánchez, M., Knapp, SD, Chian Cabrera, F., ur.; Botanični vrt Missouri: St. Louis, MO, ZDA, 2012; str. 402–403.

32. Adams, RP Identifikacija komponent eteričnih olj s plinsko kromatografijo/kvadrupolno masno spektroskopijo, 4. izdaja; Allured Publishing Corporation: Carol Stream, IL, ZDA, 2007.

33. NIST/EPA/NIH Mass Spectral Library 2005.

34. Guijarro-Muñoz, I.; Compte, M.; Álvarez-Cienfuegos, A.; Álvarez-Vallina, L.; Sanz, L. Lipopolisaharid aktivira Toll-like Receptor 4 (TLR4) posredovano NF-KB signalno pot in vnetni odziv v človeških pericitih. J. Biol. Chem. 2014, 289, 2457–2468. [CrossRef]

35. Scrima, M.; Melito, C.; Merola, F.; Iorio, A.; Vito, N.; Giori, AM; Ferravante, A. Vrednotenje aktivnosti celjenja ran hidroalkoholnega zračnega ekstrakta Salvia Haenkei na eksperimentalnih modelih in vitro in in vivo. Clin. Cosmet. Raziskati. Derm. 2020, 13, 627–637. [CrossRef] [PubMed]

36. Farahpour, MR; Pirkhezr, E.; Ashrafian, A.; Sonboli, A. Pospešeno celjenje z lokalnim dajanjem eteričnega olja Salvia Officinalis na modelu rane, okužene s Pseudomonas Aeruginosa in Staphylococcus Aureus. Biomed. Pharmacother. 2020, 128, 110120. [CrossRef]

37. Matić, I.; Revandkar, A.; Chen, J.; Bisio, A.; Dall'Acqua, S.; Cocetta, V.; Brun, P.; Mancino, G.; Milanese, M.; Mattei, M.; et al. Identifikacija Salvie Haenkei kot agenta za zatiranje heroizma z uporabo integriranega Senes-science-screening testa. Staranje 2016, 8, 3223–3240. [CrossRef]

38. Park, CH; Šin, SH; Lee, EK; Kim, DH; Kim, M.-J.; Roh, S.-S.; Yokozawa, T.; Chung, HY. Magnezijev litospermat B iz Salvia Miltiorrhiza BUNGE blaži s staranjem povzročeno ledvično vnetje in staranje prek reaktivne generacije kisika, posredovane z NADPH oksidazo. fitoter. Res. 2017, 31, 721–728. [CrossRef]

39. Najar, B.; Mecacci, G.; Nardi, V.; Cervelli, C.; Nardoni, S.; Mancianti, F.; Ebani, VV; Giannecchini, S.; Pistelli, L. Hlapne snovi in ​​protiglivično-antibakterijsko-protivirusno delovanje južnoafriške salvije Spp. Eterična olja, gojena v enotnih pogojih. Molecules 2021, 26, 2826. [CrossRef] [PubMed]

40. Abu-Darwish, MS; Cabral, C.; Ali, Z.; Wang, M.; Khan, SI; Jakob, MR; Jain, SK; Tekwani, BL; Zulfikar, F.; Khan, IA; et al. Salvia Ceratophylla L. iz južne Jordanije: Nova spoznanja o kemični sestavi in ​​bioloških aktivnostih. Nat. Prod. Bioprospect. 2020, 10, 307–316. [CrossRef] [PubMed]

41. Taarit, MB; Msaada, K.; Hosni, K.; Chahed, T.; Marzouk, B. Sestava eteričnega olja Salvia Verbenaca, ki raste divje v Tuniziji. J. Food Biochem. 2010, 34, 142–151. [CrossRef]

42. Viljoen, AM; Gono-Bwalya, A.; Kamatou, GPP; Ba¸ser, KHC; Demirci, B. Sestava eteričnega olja in kemotaksonomija Salvia Stenophylla in njenih zaveznikov S. Repens in S. Runcinata. J. Essent. Olje Res. 2006, 18, 37–45. [CrossRef]

43. Pinto, E.; Salgueiro, LR; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Gonçalves, MJ In vitro občutljivost nekaterih vrst kvasovk in nitastih gliv na eterična olja Salvia Officinalis. Ind. Prod. 2007, 26, 135–141. [CrossRef]

44. Tosun, A.; Khan, S.; Kim, Y.; Calín-Sánchez, A.; Hysenaj, X.; Carbonell-Barrachina, A. Sestava eteričnega olja in protivnetna aktivnost Salvia Officinalis L (Lamiaceae) v makrofagih Murina. Trop. J. Pharm. Res. 2014, 13, 937. [CrossRef]

45. Abu-Darwish, MS; Cabral, C.; Ferreira, IV; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Cruz, MT; Al-bdour, TH; Sal-gueiro, L. Eterično olje navadnega žajblja (Salvia Officinalis L.) iz Jordanije: Ocena varnosti v celicah sesalcev in njegovega protiglivičnega in protivnetnega potenciala. Biomed. Res. Int. 2013, 2013, 1–9. [CrossRef]

46. ​​Leporini, M.; Bonesi, M.; Loizzo, MR; Passalacqua, NG; Tundis, R. Eterično olje Salvia Rosmarinus Spenn. iz Italije kot vir spojin za spodbujanje zdravja: kemijski profil ter antioksidativno in zaviralno delovanje na holinesterazo. Rastline 2020, 9, 798. [CrossRef]

47. Choi, JK; Oh, H.-M.; Lee, S.; Kwon, TK; Shin, T.-Y.; Rho, M.-C.; Kim, S.-H. Salvia Plebeia zavira atopijskemu dermatitisu podobne kožne lezije. Am. J. Chin. med. 2014, 42, 967–985. [CrossRef]

48. Fahed, L.; Stien, D.; Ouaini, N.; Eparvier, V.; el Beyrouthy, M. Kemična raznolikost in protimikrobna aktivnost eteričnih olj Salvia multicaulis Vahl. Chem. Biodivers. 2016, 13, 591–595. [CrossRef]

49. Juliano, C.; Marchetti, M.; Campagna, P.; Usai, M. Protimikrobna aktivnost in kemična sestava eteričnega olja Helichrysum Microphyllum Cambess. Subsp. Tyrrhenicum Bacch., Brullo & Giusso Zbrano v jugozahodni Sardiniji. Savdska. J. Biol. Sci. 2019, 26, 897–905. [CrossRef] [PubMed]

50. On, X.; Zhang, L.; Chen, J.; Sui, J.; Yi, G.; Wu, J.; Ma, Y. Korelacija med kemično sestavo in protiglivičnim delovanjem eteričnega olja Clausena Lansium proti Candida spp. Molecules 2019, 24, 1394. [CrossRef]

51. Ruiz-Vásquez, L.; Ruiz Mesia, L.; Caballero Ceferino, HD; Ruiz Mesia, W.; Andrés, MF; Díaz, CE; Gonza-lez-Coloma, A. Protiglivični in herbicidni potencial eteričnih olj Piper iz perujske Amazonije. Rastline 2022, 11, 1793. [CrossRef] [PubMed]

52. Fontenelle, ROS; Morais, SM; Brito, EHS; Brilhante, RSN; Cordeiro, RA; Nascimento, NRF; Kerntopf, MR; Sidrim, JJC; Rocha, MFG Protiglivično delovanje eteričnih olj vrst Croton iz brazilskega bioma Caatinga. J. Appl. Microbiol. 2008, 104, 1383–1390. [CrossRef] [PubMed]

53. Mathela, C.; Joshi, S. Antioksidativne in protibakterijske aktivnosti eteričnega olja listov in njegovih sestavin Furanodienona in Curzerenona iz Lindera Pulcherrima (Nees.) Benth. Ex Hook. f. Farmakognozija. Res. 2012, 4, 80. [CrossRef]

54. Serra, E.; Hidalgo-Bastida, L.; Verran, J.; Williams, D.; Malic, S. Protiglivično delovanje komercialnih eteričnih olj in biocidov proti Candidi Albicans. Patogeni 2018, 7, 15. [CrossRef]

55. Burstein, VL; Beccacece, I.; Guasconi, L.; Mena, CJ; Cervi, L.; Chiapello, LS Odpornost kože na dermatofite: od eksperimentalnih modelov okužbe do bolezni pri ljudeh. Spredaj. Immunol. 2020, 11, 605644. [CrossRef]

56. Genˇci´c, MS; Aksi´c, JM; Živkovi´c Stoši´c, MZ; Ranđelovi´c, PJ; Stojanovi´c, NM; Stojanovi´c-Radi´c, ZZ; Radulovi´c, NS Povezovanje protimikrobnih in protivnetnih učinkov eteričnega olja smilja z njegovo kemično sestavo – medsebojno delovanje med glavnimi in stranskimi sestavinami. Food Chem. Toxicol. 2021, 158, 112666. [CrossRef] [PubMed]

58. A´cimovi´c, M.; Ljuji´c, J.; Vulic, J.; Željazkov, VD; Pezo, L.; Varga, A.; Tumbas Šaponjac, V. Helichrysum Ital-icum (Roth) G. Don Eterično olje iz Srbije: kemična sestava, razvrstitev in biološka aktivnost – ali je lahko primeren nov pridelek za Srbijo? Agronomija 2021, 11, 1282. [CrossRef]

58. Amorim, JL; Simas, DLR; Pinheiro, MMG; Moreno, DSA; Alviano, CS; da Silva, AJR; Dias Fernandes, P. Protivnetne lastnosti in kemična karakterizacija eteričnih olj štirih vrst citrusov. PLoS ONE 2016, 11, e0153643. [CrossRef]

59. Ascari, J.; de Oliveira, MS; Nunes, DS; Granato, D.; Scharf, DR; Simionatto, E.; Otuki, M.; Soley, B.; Heiden, G. Kemična sestava, antioksidativne in protivnetne aktivnosti eteričnih olj iz moških in ženskih primerkov Baccharis punctulata (Asteraceae). J. Ethnopharmacol. 2019, 234, 1–7. [CrossRef]

60. Singh, P.; Singh, S.; Kapoor, IPS; Singh, G.; Isidorov, V.; Szczepaniak, L. Kemična sestava in antioksidativne aktivnosti eteričnega olja in oljnih smol iz korenin Curcuma Zedoaria, del-74. Food Biosci. 2013, 3, 42–48. [CrossRef]

61. Jena, S.; Ray, A.; Banerjee, A.; Sahoo, A.; Nasim, N.; Sahoo, S.; Kar, B.; Patnaik, J.; Panda, PC; Nayak, S. Kemična sestava in antioksidativna aktivnost eteričnega olja iz listov in korenin Curcuma Angustifolia Roxb. Nat. Prod. Res. 2017, 31, 2188–2191. [CrossRef]

63. Andji´c, M.; Božin, B.; Dragini´c, N.; Koˇcovi´c, A.; Jeremič, JN; Tomović, M.; Milojevi´c Šamanovi´c, A.; Kladar, N.; ˇCapo, I.; Jakovljevi´c, V.; et al. Formulacija in ocena lokalnih formulacij na osnovi eteričnega olja Helichrysum Italicum za celjenje ran pri podganah s sladkorno boleznijo. Pharmaceuticals 2021, 14, 813. [CrossRef]

64. Ahlina, FN; Nugraheni, N.; Salsabila, IA; Haryanti, S.; Da'i, M.; Meiyanto, E. Razkrivanje povratnega učinka izvlečka Galangal (Alpinia Galanga L.) proti oksidativnemu stresu v metastatskih celicah raka dojke in normalnih celicah fibroblastov, namenjenih kot so-kemoterapevtsko sredstvo in sredstvo proti staranju. azijski pak. J. Rak Prej. 2020, 21, 107–117. [CrossRef]

64. Svet Evrope. Evropska farmakopeja, 7. izdaja; Direktorat za kakovost zdravil in zdravstvenega varstva Sveta Evrope: Strasbourg, Francija, 2010; ISBN 978-92-871-6700-2.

65. van den Dool, H.; Kratz, PD Posplošitev sistema retencijskih indeksov, vključno z linearno temperaturno programirano plinsko-tekočinsko porazdelitveno kromatografijo. J. Chromatogr. 1963, 11, 463–471. [CrossRef]

66. Inštitut za klinične in laboratorijske standarde. Referenčna metoda za testiranje občutljivosti filamentoznih gliv na protiglivično raztopino; Odobren standard M38-A2, 2. izdaja; Inštitut za klinične in laboratorijske standarde: Wayne, PA, ZDA, 2008; ISBN 1-56238-668-9.

67. Inštitut za klinične in laboratorijske standarde. Referenčna metoda za testiranje protiglivične občutljivosti kvasovk z redčenjem brozge; Odobren standard M27-A3, 3. izdaja; Inštitut za klinične in laboratorijske standarde: Wayne, PA, ZDA, 2008; ISBN 1-56238-666-2.

68. Green, LC; Wagner, DA; Glogowski, J.; Skipper, PL; Wishnok, JS; Tannenbaum, SR Analiza nitrata, nitrita in [15N]nitrata v bioloških tekočinah. Analno Biochem. 1982, 126, 131–138. [CrossRef]

69. Piras, A.; Maccioni, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Gonçalves, MJ; Alves-Silva, JM; Silva, A.; Cruz, MT; Salgueiro, L.; Maxia, A. Kemična sestava in biološka aktivnost eteričnega olja Teucrium Scordium L. Subsp. Scordioides (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) z otoka Sardinija (Italija). Nat. Prod. Res. 2021, 36, 5828–5835. [CrossRef] [PubMed]

70. Martinotti, S.; Ranzato, E. Preizkus celjenja ran s praskami. V epidermalnih celicah: metode v molekularni biologiji; Turksen, K., ur.; Humana: New York, NY, ZDA, 2019; Letnik 2109, str. 225–229.

Zavrnitev odgovornosti/opomba založnika:Izjave, mnenja in podatki, vsebovani v vseh publikacijah, so izključno last posameznih avtorjev in sodelavcev in ne MDPI in/ali urednikov. MDPI in/ali urednik(-i) zavračajo odgovornost za kakršne koli poškodbe ljudi ali premoženja, ki so posledica kakršnih koli idej, metod, navodil ali izdelkov, navedenih v vsebini.