Profiliranje metabolitov in aktivnost proti staranju riža Koji, fermentiranega z Aspergillus Oryzae in Aspergillus Cristatus: primerjalna študija Ⅱ

3. Razprava

Različni deli riža, kot so lupine, otrobi, zarodek in endosperm, od površine do notranjosti, imajo različne kemične sestave (26). Zlasti riževi otrobi vsebujejo različnefenolne kislineinflavonoidi, za katere je znano, da razstavljajoantioksidativno delovanje.Poleg tega je celična stena riža sestavljena iz arabinoksilanske strukture, ki vključuje ksilozo, arabinozo, ferulinsko kislino in ferulinsko kislino (27). Celično steno riža je na splošno težko prodreti, prednost riževega kojija pa je preprosta penetracija v riževe celične stene z različnimi encimi, kot sta proteaza in glukozidaza iz mikrobov inokuluma (24. Zato riževa koii kaževišje ravni inhibitorne aktivnosti tirozinazeinantioksidativne aktivnostikot njegove surovine, ker vsebuje dragocene obogatene spojine (28.

Kliknite tukaj za več informacij o antioksidativni aktivnosti Cistanche

Sledili smo metabolomskemu pristopu za riž koji, fermentiran z dvema različnima nitastima glivama, kar je razjasnilo pomembne razlike v encimski aktivnosti, proizvodnji metabolitov in bioaktivnosti. Aktivnosti različnih encimov, kot so a-amilaza, &glukozidaza in -glukozidaza, ki jih proizvajata inokulirani A. cristatus in A. oryzae, so se povečevale s časom fermentacije (slika 3). Ker ti encimi razgradijo arabinoksilansko strukturo, so bile različne fenolne kisline ločene od riževe celične stene v obeh vzorcih, kot je prikazano na sliki 2. Te fenolne kisline so potencialni antioksidanti, ki blažijo oksidativni stres 291. Tako sta se antioksidativna aktivnost in test TPC povečala z podaljševanje časa fermentacije, ko se je povečala vsebnost fenolne kisline (sliki 2 in 4). Zlasti ima RAC višjo vsebnost flavonoidov kot RAO, ker ima višjo raven -glukozidaze, ki hidrolizira -glikozidno vez iz stene riževe celice med rast A. cristatus v rižu koji. Poleg ločitve od celične stene riža glukozidaza hidrolizira obliko flavonoidnega glukozida v obliko aglikona, ki ima večjo antioksidativno aktivnost 30]. Povečana oblika flavonoidnega glukozida in oblika aglikona povečata antioksidativne aktivnosti, kot so ABTS, DPPH FRAP in TFC, kar lahko vpliva na antioksidativno aktivnost RAC, kot je prikazano na zemljevidu korelacijske mreže (slika 4). Ta pojav so opazili tudi v prejšnji študiji, ki je pokazala biotransformacijo glukozidnih izoflavonov v aglikone in naraščajoče vzorce antioksidativne aktivnosti glede na čas mentacije v soji, fermentirani z. cristatus [311.

RAO ima višjo stopnjo aktivnosti a-glukozidaze, ki cepi a-glikozidne vezi in samodejno ustvari večjo vsebnost glukoze. Poleg dejstva, da je glukoza glavni vir ogljika za glive, se je v RAC raven glukoze zmanjšala po fermentaciji, ker je bila uporabljena za sintezo sekundarnih metabolitov, kot so derivati ​​auroglavcina, ki so značilne pigmentne spojine, ki jih proizvaja A. cristatus, in ne A. .orizne. Prejšnje študije so poročale, da imajo derivati ​​auroglavcina aktivnost pri DPPH in se domnevajo kot potencialne antioksidativne spojine [32]. Poleg tega bi lahko zrušena riževa celična stena omogočila encimom, da prodrejo v najbolj notranje dele riža [24]. Zato se lahko iz zunanje stene riža prosto in brez prekinitev ekstrahira vedno več metabolitov.

Na zemljevidu korelacijske mreže med biološkimi aktivnostmi in presnovki RAO in RAC (slika 4) so ​​bile skupne težnje, da so flavonoidi, organske kisline, sladkorni derivati ​​in maščobne kisline predlagani kot možni dejavniki, ki prispevajo k bioaktivnosti. Flavonoidi in fenolne kisline so znani antioksidanti in imajo številne prednosti glede različnih funkcij. Zaradi svoje sposobnosti ublažitve oksidativnega stresa se uporabljajo za izboljšanje kakovosti hrane in ublažitev staranja kože [33]. Poleg tega je prejšnja študija poročala, da bi lahko maščobne kisline in antioksidanti ustvarili sinergistični učinek za preprečevanje in obvladovanje staranja kože [34].

Po drugi strani auroglaucin in derivati ​​lizofosfolipida dodatno prispevajo k metabolitom v RAC [35]. Derivati ​​auroglavcina imajo antioksidativne aktivnosti, kot je navedeno zgoraj, zato domnevamo, da imajo potencial za prekinitev verižnih reakcij prostih radikalov za lajšanje obremenitev kože. Yahagi et al. dokazali, da lahko lizofosfolipidi vzdržujejo vlaženje kože s povečanjem izražanja dejavnikov, povezanih s kožno pregrado in funkcijami hidracije v koži [36]. Vlaženje je ključnega pomena za zdravo kožo, saj suhost povzroči okvaro kože, za katero so značilne hrapavost, luskasta koža in drobne gube [37, 38]. Ocenjujemo, da imajo auroglaucin in lizofosfolipidi boljše učinke proti staranju kože na končni stopnji fermentacije v RAC kot v RAO. Zhao et al. dokazali, da lahko opečni čaj Fuzhuan, ki vsebuje prevladujočo glivo A. cristatus, zavira fotostaranje z dušenjem ROS in sprožitvijo signalnih kaskad Nrf2 [21]. Zato domnevamo, da RAC nudi večji potencial proti staranju kot RAO z delovanjem po posrednih poteh, kot je vzpostavitev boljših pogojev kože za obilno navlaženost inlajšanje stresa zaradi prostih radikalov.

Na splošno menimo, da lahko okrepljene maščobne kisline, fenolne kisline, flavonoidi, lizofosfolipidi in hidrokinoni povečajo antioksidativne aktivnosti in izboljšajo izražanje RNA elastina in kolagena ter zavirajo izražanje RNA MMP-1 ob koncu fermentacijo. Te spojine so pokazale različne vzorce spreminjanja metabolitov glede na glivo inokulum in vplivale na različne bioaktivnosti. Ta študija je razjasnila razliko v celotnem metabolizmu med različnimi vrstami istega rodu Aspergillus z uporabo metabolomičnega pristopa. Poleg tega so različne encimske aktivnosti vplivale na proizvodnjo različnih metabolitov in povzročile različne bioaktivnosti v RAO in RAC

4. Materiali in metode

4.1. Kemikalije in reagenti

4.2. Priprava vzorca in ekstrakcija

Plesni koji A. oryzae KCCM 11372 (Korean Culture Center of Microorganism, KCCM; Republika Koreja) in A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF iz Cosmax BTI R&I center; Seongnam, Koreja) sta bili uporabljeni za fermentacijo riža in ločeno cepljeni . Vsak mikroorganizem smo vzdrževali na agarju s sladnim ekstraktom (sladni ekstrakt, 20 g; glukoza, 20 g; pepton, 1 g; agar, 20 g/L) pri 28 ◦C. Bioproces korakov fermentacije za proizvodnjo kojija je bil prilagojen iz Lee et al. [11]. Vzorci riževega kojija, fermentirani z A. oryzae in A. cristatus, so bili pobrani vsaka 2 dni (od dneva 0 do dneva 8) in shranjeni pri pogojih globokega zmrzovanja (–80 ◦C) do nadaljnjih analiz. Vsi vzorci so bili pripravljeni z dvema biološkima ponovitvama.

Metoda ekstrakcije vzorca riževega kojija je bila prilagojena iz Lee et al. z manjšimi modifikacijami [11]. Na kratko, zdrobljene liofilizirane vzorce riževega kojija (5 g) smo ekstrahirali z dodajanjem 80 odstotkov vodnega etanola (40 ml) in mešanjem na orbitalnem stresalniku (200 vrtljajev na minuto 24 ur) pri sobni temperaturi. Po centrifugiranju vzorcev pri 10,000 obratih na minuto 5 minut pri 4 ◦C smo supernatante filtrirali z 0,22 µm filtrom Millex GP (Merck Millipore, Billerica, MA, ZDA). Filtrirane ekstrakte vzorcev smo posušili s hitrim vakuumskim koncentratorjem (Hanil, Seul, Koreja) in izmerili suho maso, da bi ocenili izkoristek ekstrakcije.

4.3. GC–TOF–MS analiza

Korake derivatizacije ekstrahiranih vzorcev riževega kojija so opisali Lee et al. [11]. Analiza GC–TOF–MS je bila izvedena na sistemu Agilent 7890A GC (Santa Clara, CA, ZDA) s Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, ZDA). Nosilni plin (helij) je bil uporabljen z RTx-5MS (dolžina 30 m × 0,25 mm notranji premer, J&W Scientific, Folsom, CA, ZDA) pri konstantnem pretoku 1,5 ml/min. Temperaturi injektorja in ionskega vira smo vzdrževali pri 250 oziroma 230 ◦C. Temperaturo pečice smo 2 minuti vzdrževali pri 75 ◦C in nato povečali na 300 ◦C pri 15 ◦C/min, kar smo vzdrževali 3 minute. Nato smo vbrizgali 1 µL vzorca z razponom masnega skeniranja m/z 50–800. Vse analize vzorcev so bile izvedene s tremi analitskimi ponovitvami.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS analiza

Ekstrahirani vzorci riževega kojija so bili analizirani na sekundarne presnovke z ultravisoko zmogljivo tekočinsko kromatografijo s kvadrupolno orbitrap tandemsko masno spektrometrijo z linearno pastjo (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) z uporabo protokolov, ki so jih opisali Kwon et al. [39]. Vsak vzorec je bil ločen s kolono Phenomenex KINETEX® C18 (100 mm 2,1 mm, velikost delcev 1,7 m; Torrance, CA, ZDA). Masni spekter in obseg fotodiodnih nizov v načinu pozitivnih in negativnih ionov sta bila nastavljena na m/z 100−1000 oziroma 200−600 nm.

4.5. Obdelava podatkov in statistična analiza

Neobdelani podatki GC–TOF–MS in UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS so bili pretvorjeni v format netCDF (*.cdf) s programsko opremo Leco ChromaTOF oziroma Thermo Xcalibur. Ustrezne datoteke net CDF (*.cdf) so bile podvržene obdelavi podatkov s programsko opremo MetAlign (dostopano 13. julija 2021) z uporabo protokolov, ki so jih opisali Lee et al. [11,24]. Podatki masne spektrometrije, ki predstavljajo primerno maso vrha (m/z), retenzijske čase (min) in informacije o površini vrha kot spremenljivke, so bili ovrednoteni s programsko opremo SIMCA-P plus 12.0 (Umetrics, Umea, Švedska) za multivariatno statistično analizo. Pred analizo glavnih komponent (PCA), delno diskriminantno analizo najmanjših kvadratov (PLS-DA) in ortogonalno delno diskriminantno analizo najmanjših kvadratov (OPLS-DA) so bili nabori podatkov logaritmično transformirani, varianca enote pa je bila skalirana za primerjavo riževega kojija fermentiran z različnimi gobami. Statistika PASW 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, ZDA) je bila uporabljena za testiranje značilnih razlik (p-vrednost < 0.05) z enosmerno analizo variance in za izračun vrednosti korelacijskega koeficienta za korelacijski zemljevid. Zemljevid korelacijske mreže med metaboliti, ki imajo vrednost Pearsonovega korelacijskega koeficienta višjo od 0,5, in bioaktivnostmi je bil izdelan s programsko opremo Cytoscape (https://www.cytoscape.org/ (dostop 13. julija 2021)). Identifikacija poskusnih metabolitov je bila izvedena s primerjanjem molekulskih mas in molekulske sestave, retenzijskega časa, masnega fragmenta

vzorcev in absorbanco ultravijoličnih (UV) podatkov iz literature in naše interne knjižnice

4.6. Določanje encimskih aktivnosti

Testi encimske aktivnosti za -amilazo, -glukozidazo in -glukozidazo so bili izvedeni v skladu s prejšnjimi študijami [25,40,41]. Količino 10 g vsakega vzorca riževega koji smo ekstrahirali v 90 ml vode s stresanjem na orbitalnem stresalniku pri 120 pm in 25 °C 1 uro. Po filtriranju vzorcev smo supernatante uporabili za oceno aktivnosti encimov.

4.7. Določanje antioksidativnih aktivnosti ter skupne vsebnosti fenolov in flavonoidov

Za določitev antioksidativne aktivnosti vzorcev riževega kojija so bili v treh izvodih izvedeni testi ABTS, DPPH, antioksidativne moči, ki zmanjšuje železo (FRAP), vsebnosti skupnih fenolov (TPC) in vsebnosti skupnih flavonoidov (TFC).

Testi ABTS in FRAP so bili izvedeni z uporabo metode, ki so jo opisali Lee et al. [24]. Na kratko, osnovna raztopina ABTS, razredčena z destilirano vodo, da se doseže končna absorbanca 0,7 ± 0.02 pri 750 nm (180 µL), je bila dodamo vsakemu ekstraktu vzorca (20 µL) v 96-plošči z vdolbinicami. Pustili smo, da je reakcija potekala 6 minut v temi pri sobni temperaturi. Absorbanco smo izmerili pri 750 nm s spektrofotometrom. Za test FRAP zmes 300 mM acetatnega pufra (pH 3,6), 20 mM železovega (III) klorida in 10 mM raztopine 2,4,6-tripiridil-S-triazina (TPTZ) v 40 mM HCl (10:1:1, v/v/v). Vzorec (10 µL) smo zmešali s 300 µL reagenta FRAP in inkubirali pri sobni temperaturi 6 minut. Absorbanco smo izmerili pri 570 nm. Test DPPH je bil izveden po metodi, prilagojeni iz Won et al. [42], kjer smo 180 µL osnovne raztopine DPPH (0,2 mM v etanolu) zmešali z 20 µL riževega kojija z dvema različnima izvlečkoma gliv v 96-ploščah z vdolbinicami in pustili reagirati 20 minut pri sobni temperaturi v temi. Absorpcija prostih radikalov z DPPH je bila izmerjena pri 515 nm. Rezultati ABTS, FRAP in DPPH so predstavljeni kot koncentracija Trolox ekvivalentne antioksidativne kapacitete (TEAC) (mM) na miligram kojija. Standardne koncentracijske krivulje so bile v razponu od 0,0078 mM do 1 mM TEAC.

Za testa TFC in TPC je metoda, ki so jo uporabili Lee et al. [25] je sledil. Za test TFC smo 20 µL vsakega vzorca riževega kojija zmešali z 20 µL 1 N NaOH in 180 µL 90-odstotnega dietilen glikola v 96-ploščo z vodnjaki. Po inkubaciji zmesi 60 minut pri sobni temperaturi smo izmerili absorbanco pri 405 nm. TFC je predstavljen kot koncentracija ekvivalenta naringina (NE) (mM) na miligram kojija. Standardna koncentracijska krivulja je bila linearna med 0,0027 in 0,3445 mM NE. Za analizo testa TPC smo 20 µL vsakega vzorca inkubirali s 100 µL 0,2 N reagenta Folin–Ciocalteu v 96-ploščah z vdolbinicami pri sobni temperaturi 6 minut. Nato smo mešanici dodali 80 µL 7,5-odstotne raztopine natrijevega karbonata (Na2CO3) in pustili reagirati 60 minut pri sobni temperaturi. Nazadnje smo ocenili absorbanco pri 750 nm. Rezultati so prikazani kot koncentracije ekvivalenta galne kisline (GE) (mM) na miligram kojija v standardnem območju koncentracij 0,0230–2,9391 mM GE.

4.8. Celične kulture

4.9. Verižna reakcija s polimerazo v realnem času

Za izolacijo in kvantifikacijo celotne RNA iz celičnih pelet smo uporabili reagent Trizol, analizo pa smo opravili s spektrofotometrom. Sintezo cDNA smo izvedli v skupnem reakcijskem volumnu 20 µL; reakcijska zmes je bila sestavljena iz 2 µg celotne RNA, oligo (dT) in predmešanice reverzne transkripcije pod naslednjimi reakcijskimi pogoji: 45 °C 45 minut, čemur je sledilo 95 °C 5 minut. RT-PCR smo uporabili za kvantifikacijo izražanja genov, rezultate pa smo nato analizirali s sistemsko programsko opremo StepOne PlusTM (Applied Biosystems, Foster City, CA, ZDA). Pomnoževanja RT-PCR so bila izvedena z uporabo SYBR Green PCR Master Mix s predhodno mešanico ROX (Applied Biosystems, Foster City, CA, ZDA) in primerji (Bioneer, Daejeon, Koreja) v instrumentu ABI 7300 po protokolu proizvajalca. Reakcijski pogoji so bili naslednji: začetek pri 95 °C za 10 minut, čemur so sledili ciklični pogoji 95 °C za 15 sekund, 60 °C za 30 sekund in 72 °C za 30 sekund za 40 ciklov. -aktin je bil uporabljen kot notranji nadzor.

Za zaključek je riž koji pokazal proizvodnjo različnih metabolitov in bioaktivnosti glede na različne uporabljene vrste Aspergillus. Višje ravniflavonoidiin derivati ​​auroglavcina v RAC povzročili višjeantioksidativno delovanjekot v RAO. Poleg tega so sinergistični učinki maščobnih kislin inantioksidativne spojineki so jih našli v obeh, so bili povezani z izražanjem RNAfaktor proti staranju kože. Derivati ​​auroglavcina in lizofosfolipidi, najdeni v RAC, so bili tudi kandidati, ki bi jih lahko povezali zEkspresija RNA faktorjev proti staranju kože. Zato, čeprav je rižev koji fermentiran z uporabo članov istega rodu (Aspergillus), obstajajo znatne razlike v encimskih aktivnostih in metabolitih za različne vrste in vplivajobioaktivnostikot naprimerantioksidantindejavnosti proti staranju. Zato ta študija zagotavlja celovit vpogled in logiko za racionalno izbiro inokulacijskih mikrobov glede na

metabolomike, za izboljšanje kakovosti komercialne proizvodnje kojija.

Dodatni materiali:Naslednje je na voljo na spletu na sliki S1: graf rezultatov PLS-DA (A, B) in graf rezultatov OPLS-DA (C) za rižkojifermentiran zAspergillus cristatusozA. oryzaeso bili pridobljeni iz UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) in GC–TOF–MS (B). Tabela S1: Seznam bistveno različnih metabolitov iz rižakojiz različnimiAspergillus spp. med fermentacijo, identificirano z UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS, Tabela S2: Seznam bistveno različnih metabolitov iz rižakojiz različnimiAspergillus spp. med fermentacijo, identificirano z GC-TOF-MS, Slika S2: Korelacijski zemljevid bioaktivnosti (učinek kožnih celic in antioksidativna aktivnost) in rižkojifermentiran zAspergillus cristatusozA. oryzaemetabolitov po Pearsonovem korelacijskem koeficientu. Vsak kvadrat označuje vrednosti Pearsonovega korelacijskega koeficienta (r).

Avtorski prispevki:Konceptualizacija, CL in SL; metodologija, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) in JR; validacija, HL, SL in SK (Seoyeon Kyung); formalna analiza, HL in SK (Seoyeon Kyung); preiskava, HL in SL; viri, JR, SK (Seunghyun Kang) in MP; pisanje—izvirna priprava osnutka, HL; pisanje—pregledovanje in urejanje, HL in SL; vizualizacija, HL; nadzor, SL in CL; projektna administracija, SK (Seunghyun Kang), MP in CL; pridobitev sredstev, CL Vsi avtorji so prebrali in se strinjajo z objavorazličica rokopisa.

Financiranje:To delo je podprl Korejski inštitut za načrtovanje in vrednotenje tehnologije v prehrani, kmetijstvu in gozdarstvu (IPET) prek programa raziskav in razvoja kmetijskega mikrobioma (strateška pobuda za mikrobiome v kmetijstvu in prehrani), ki ga financira ministrstvo za kmetijstvo, prehrano in podeželje. Zadeve (MAFRA) (številka dotacije 918011-04-3-HD020). Poleg tega je to delo podprl Korejski inštitut za načrtovanje in vrednotenje tehnologije v prehrani, kmetijstvu in gozdarstvu (IPET) prek razvojnega programa živilske tehnologije z visoko dodano vrednostjo, ki ga financira Ministrstvo za kmetijstvo, prehrano in podeželje (MAFRA). (številka odobritve 318027-04-3-HD030)

Izjava o razpoložljivosti podatkov:Podatki, predstavljeni v tej študiji, so na voljo na zahtevo pridopisni avtor

Zahvala:To raziskavo je podprl Sklad za raziskovalce univerze Konkuk v2020.

Reference

1. Sanlier, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC Zdravstvene koristi fermentiranih živil. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Optimizacija za pripravo riževega kojija z uporabo Aspergillus oryzae CJCM-4, izolirane iz korejskega tradicionalnega mejuja. Food Sci. Biotehnologija. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J.; Ai, L. Izboljšanje profilov okusa v kitajskem riževem vinu z ustvarjanjem fermentiranega kvasa z vrhunsko toleranco na etanol in fermentacijsko aktivnostjo. Food Res. Int. 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazawa, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. Vpliv starterja koji na metabolite v japonski alkoholni pijači sake, narejeni iz sake riža Koshitanrei. Biosci. Biotehnologija. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. Lokalna tajska sorta lepljivih črnih riževih otrobov: Vir funkcionalnih spojin pri imunomodulaciji, celični sposobnosti preživetja in sintezi kolagena ter inhibiciji matrične metaloproteinaze -2 in -9. J. Funkt. Živila 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J.; Kim, HY; Park, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Profiliranje metabolita in bioaktivnost riževega kojija, fermentiranega s sevi Aspergillus. J. Microbiol. Biotehnologija. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Oksidanti, antioksidanti in degenerativne bolezni staranja. Proc. Natl. Akad. Sci. ZDA 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

9. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Cronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Prosti radikali in antioksidanti pri normalnih fizioloških funkcijah in človeških boleznih. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oksidativni stres in nevrodegenerativne bolezni: Pregled zgornjih in spodnjih antioksidativnih terapevtskih možnosti. Curr. nevrofarmakol. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Antioksidativna aktivnost in aktivne spojine riža koji je fermentiran z Aspergillus candidus. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; Shin, HW; Moon, BS; Lee, CH Časovno ločeni primerjalni metabolomi za Koji fermentacijo z rjavim, belim in ogromnim embrionalnim rižem. Food Chem. 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Shaheen, N.; Fatima, A.; Nasab, R. Učinki retinola in alfa hidroksi kisline proti staranju na elastinska vlakna umetno fotostaranih človeških dermalnih fibroblastnih celičnih linij. Int. J. Med Health Biomed. Pharm. inž. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, podpredsednik; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Jožef, JP; Surapaneni, KM In vitro moč celjenja ran metanolnega izvlečka listov Aristolochia saccata je verjetno posledica njegovega stimulativnega učinka na izražanje kolagena-1. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Vplivi peroralno vzetega s karotenoidi bogatega izvlečka kodrastega ohrovta na indeks kolagena I/elastina kože. Nutrients 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG. Zaviranje UV-induciranih ROS in poškodb kolagena z ekstraktom Phyllanthus emblica v normalnih človeških dermalnih fibroblastih. J. Cosmet. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; Isami, F.; Matsuda, H. Zaviralne aktivnosti matrične metaloproteinaze-1 ekstrakta semena Morinda citrifolia in njegovih sestavin v človeških dermalnih fibroblastih, obsevanih z UVA. Biol. Pharm. Bik. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Song, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Učinek fermentiranega izvlečka riževih otrobov proti fotostaranju na normalne kožne fibroblaste, ki jih povzroča UV. EUR. Food Res. Technol. 2010, 231, 163–169. [CrossRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Riževi antioksidanti: fenolne kisline, flavonoidi, antocianini, proantocianidini, tokoferoli, tokotrienoli, -orizanol in fitinska kislina. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Bečman, A.; Phillips, RD; Chen, J. Spremembe izbrane fizične lastnosti in encimske aktivnosti riža in ječmena koji med fermentacijo in shranjevanjem. J. Hrana. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Kang, D.; Su, M.; Duan, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, potencialna probiotična gliva iz opečnega čaja Fuzhuan, je ublažila debelost pri miših z modulacijo črevesne mikrobiote. Prehranska funkcija. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, SH Zaščita pred UVB-induciranim fotostaranjem z vodnim izvlečkom čaja Fuzhuan-Brick prek MAPK-jev/Nrf2- posredovane znižane regulacije MMP-1. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YC; Choi, I.; Kim, GB Vpliv fermentacije na antioksidativno aktivnost rastlinskih živil. Food Chem. 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Spletni pregled in identifikacija spojin za lovljenje prostih radikalov v Angelica dahurica, fermentirana z Eurotium cristatum z uporabo sistema HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH Metabolomics razkriva optimalno predobdelavo zrn (mletje) v smeri fermentacije riža Koji. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Vprašaj za več:

E-pošta:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plus 86 15292862950