Uporaba kvercetina za navadnega krapa (Cyprinus Carpio): I. Učinki na rast, humoralno imunost, status antioksidantov, imunsko povezane gene in odpornost proti toplotnemu stresu

Ta študija je bila narejena, da bi ocenili učinek različnih ravni kvercetina na rast, imunski odziv, status antioksidantov, serumske biokemične dejavnike in odzive na stres pri visoki temperaturi pri navadnem krapu (Cyprinus carpio). Skupno število 216 navadnih krapov s povprečno težo 27:21 ± 53 g je bilo razdeljenih v 12 rezervoarjev (štiri tretiranja × tri ponovitve) in hranjenih s 0 mg/kg kvercetina (T0), 200 mg/kg kvercetina (T1), 400 mg/kg kvercetina (T2) in 600 mg/kg kvercetina (T3) 60 dni. Prišlo je do pomembnih razlik v uspešnosti rasti in najvišjo končno telesno težo (FBW), povečanje telesne mase (WG), specifično hitrost rasti (SGR) in vnos krme (FI) so opazili pri T2 in T3 (P <0:05) .

Med serumskimi biokemičnimi dejavniki in imunostjo obstaja tesna povezava. Biokemični dejavniki v serumu so glavni presnovki v človeškem telesu in zvišanje ali zmanjšanje njihove ravni bo vplivalo na imunost človeškega telesa.

Serumski biokemični dejavniki vključujejo beljakovine, ogljikove hidrate, maščobe in druge snovi, ki tvorijo kompleksno presnovno mrežo v človeškem telesu. Ko je človeško telo v zdravem stanju, bodo ravni serumskih biokemičnih dejavnikov v uravnoteženem stanju, kar pomaga ohranjati zdravo stanje človeškega telesa.

Ko človeško telo trpi zaradi bolezni ali stresa, se bodo ravni serumskih biokemičnih dejavnikov spremenile, kar bo zmanjšalo imunost. Na primer, ko se ravni beljakovin in amilaze v serumu zmanjšajo, bo imunost telesa znatno oslabljena, kar ima za posledico večjo dovzetnost za bolezni.

Zato je zelo pomembno ohranjati ravnovesje serumskih biokemičnih dejavnikov, kar lahko dosežemo s spremembo življenjskega sloga. Na primer, več gibanja, uživanje manj hrane z visoko vsebnostjo maščob, soli in sladkorja ter uživanje več svežega sadja in zelenjave lahko pomaga telesu vzdrževati zdrave ravni biokemičnega faktorja v serumu in s tem izboljšati imunost.

Skratka, serumski biokemični dejavniki so tesno povezani s človeško imunostjo in skupaj sestavljajo presnovno mrežo telesa. Ohraniti moramo zdrav življenjski slog in vzdrževati biokemične dejavnike v serumu v ravnovesju, da zaščitimo svoje zdravje. S tega vidika moramo izboljšati našo imuniteto. Cistanche lahko znatno izboljša imunost, saj ima Cistanche tudi protivirusne in protirakave učinke, ki lahko okrepijo sposobnost imunskega sistema za boj in izboljšajo odpornost telesa.

Kliknite zdravstvene koristi cistanche

Različne ravni kvercetina so bistveno povečale aktivnost poti komplementa (ACH50) in aktivnost lizocima tako pred toplotnim stresom kot po njem (P < 0:05). Katalaza (CAT), glutation peroksidaza (GPx) in malondialdehid (MDA) so bile znatno povečane pri ribah, izpostavljenih toplotnemu stresu, vendar so ribe, hranjene z dopolnjeno prehrano s kvercetinom, pokazale najnižje ravni pred in po toplotnem stresu (P < {{ 7}}:05). Ravni superoksid dismutaze (SOD) so bile znatno povečane pri dietah, hranjenih z ribami, dopolnjenimi s kvercetinom v obeh fazah (P <0:05). Različne ravni kvercetina so vodile do pomembnega znižanja alanin aminotransferaze (ALT) in aspartat aminotransferaze (AST) pred in po zahtevnem testu (P <0:05).

Ravni glukoze in kortizola so bile bistveno višje v kontrolni skupini v primerjavi z drugimi zdravljenji v obeh fazah (P < {{0}}:05). Izražanje glutation peroksidaze (GPx) in lizocima je bilo opazno povečano pri ribah, hranjenih z dietami, dopolnjenimi s kvercetinom (P <0:05). Za rastni hormon (GR) in interlevkin -8 (IL8) niso opazili izrazitih učinkov (P > 0:05). Skratka, prehranski dodatki kvercetina (400- 600 mg/kg kvercetina) so izboljšali rast, imunost in status antioksidantov ter povečali toleranco na toplotni stres.

1. Uvod

Ribogojstvo se postopno razvija vzporedno z rastjo svetovnega prebivalstva. Kljub temu intenzivne proizvodne dejavnosti, nenadne temperaturne spremembe, nenormalno podnebje in drugi okoljski pogoji kot taki povzročajo stres ribam ter ovirajo kakovost proizvodnje in donos s sprožitvijo imunske depresije in povečanih nalezljivih epidemij. Eden najpomembnejših okoljskih elementov v ribogojni industriji je temperatura, saj lahko vpliva na metabolizem, prehranjevanje, rast, preživetje in odpornost vodnih živali na bolezni [1–3]. Temperaturne spremembe so zmanjšale rast, učinkovitost krme, fiziološko delovanje, imunski odziv in oksidativni status v organih vodnih živali ([3–5].

Za boj proti takšnim izzivom je vključitev funkcionalnih krmnih dodatkov v ribjo prehrano okolju prijazna in učinkovita. Ti dodatki lahko potencialno povečajo rast in sposobnost razmnoževanja rib, kakovost filejev ter odpornost na bolezni in okoljske razmere.

Polifenoli in aditivi, bogati s polifenoli, so dodani krmi za vodne živali, da bi povečali rast, imunski odziv, status antioksidantov in odpornost proti boleznim [6, 7]. Kvercetin velja za glavni razred flavonoidov (flavonolov), družine polifenolnih spojin, zato ga je v izobilju veliko sadja in zelenjave, vključno s čajem, čebulo, jabolki, jagodami, zeljem, oreščki in cvetačo.

Splošno priznano je, da kvercetin zavira nastajanje biofilma številnih patogenih bakterij, kot so Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Streptococcus mutants, Escherichia coli in Pseudomonas aeruginosa, s svojimi lastnostmi, kot so zatiranje poti zaznavanja kvoruma, zaviranje iztočnih črpalk, motnje ali spremembe plazemske membrane in blokiranje sinteze nukleinske kisline [8]. Poleg tega ima kvercetin številne koristne lastnosti, kot je protirakavo delovanje [9], antioksidant in protivnetno delovanje [10].

Prejšnje ugotovitve so pokazale, da je prehranski kvercetin pozitivno vplival na status antioksidantov [11, 12], rast [13, 14], kakovost mesa [15], hematološke in imunske parametre [16], odpornost na bolezni [17, 18], in obrambne lastnosti kirnjinega iridovirusa [19–21]. Nekatere raziskave so pokazale, da je prehranski kvercetin izboljšal rast piščanca [22] in izboljšal senzorične rezultate, kot so barva, tekstura in splošna sprejemljivost kozjega hrbta [23]. Pri vodnih živalih je kvercetin nad 400 mg/kg izboljšal rast tilapije (Oreochromis spp.) [24].

Prejšnje študije so poročale, da prehranska zeliščna dopolnila zmanjšajo označevalce stresa pri nekaterih vrstah rib in/ali školjk, kot so Macrobrachium rosenbergii [25], Megalobrama amblycephala [26] in Oncorhynchus mykiss [27], ki so izpostavljeni visoki temperaturi. Vendar ni na voljo nobenih informacij o učinku kvercetina v prehrani na vodne živali, izpostavljene visokotemperaturnemu stresu. Zato je bila ta študija izvedena za primerjavo učinka prehranskih dodatkov kvercetina na rast, nekatere imunske parametre, status antioksidantov, nekatere biokemične spremenljivke v serumu in odzive na stres pri visoki temperaturi pri ribah.

2. Material in metode

2.1. Experimental Diets. Four experimental diets with different quercetin (>95-odstotna čistost, Sigma Chemical Co., ZDA) so bile formulirane (tabela 1). Na kratko, suhe sestavine so bile temeljito premešane. Ko so tekoče sestavine difundirale v zmes, smo dodali deionizirano vodo (250 ml na kg prehrane). Pripravljeno zmes smo ekstrudirali v električnem mlinčku za meso (MG1400R, Pars Khazar, Teheran, Iran), krmo pa smo razdelili glede na velikost ribjih ust (1 mm v premeru). Nazadnje so bile pripravljene štiri poskusne diete, vključno z 0 mg/kg kvercetina (T0), 200 mg/kg kvercetina (T1), 400 mg/kg kvercetina (T2) in 600 mg/kg kvercetina (T3). Pelete smo posušili v sušilni omari in nato do uporabe hranili pri 4 stopinjah C. Kemična sestava, vsebnost vlage, surovih beljakovin, lipidov in pepela so bili potrjeni z naslednjimi standardnimi metodami [28].

2.2. Ribe in poskusni pogoji. Skupno število 216 navadnih krapov s povprečno težo 27:21 ± 53 g je bilo pridobljenih iz zasebne ribogojnice in prestavljenih v raziskovalno dvorano Univerze Gonbad (Gonbad, Iran). Shranjene so bile v 12 rezervoarjih z gostoto 18 rib na rezervoar in privajane na eksperimentalne pogoje 10 dni. Med obdobjem privajanja so navadne krape hranili z bazalno hrano dvakrat na dan. Ob koncu prilagoditvenega časa so bili ti rezervoarji naključno imenovani za 4 zdravljenja s 3 ponovitvami, ribe pa so bile 60 dni hranjene s hitrostjo 2,5 odstotka telesne teže dvakrat na dan. Ribji odpadki in polovica akvarijske vode so bili vsak dan izsesani in nadomeščeni z dobro prezračevano vodo. Parametre kakovosti vode, kot so temperatura, raztopljeni kisik in pH, smo redno merili in ohranjali na standardnih ravneh za navadnega krapa (temperatura 24:1±0:5C, raztopljeni kisik 6:8±0:2mg/l, pH7 :36 ± 0:1 in fotoperioda 12D: 12L) [29].

2.3. Biometrija in odvzem krvnih vzorcev. Po 24-urnem postu so vse ribe v vsakem akvariju anestezirali z 200 mg l-1 prahu nageljnovih žbic in zabeležili težo vsake ribe [30]. Učinkovitost rasti in stopnja preživetja sta bila izračunana z uporabo skupne formule [7]. Za odvzem vzorca krvi so bile naključno izbrane tri ribe na rezervoar (9 rib na zdravljenje). Vzorce krvi smo zbrali preko repne vene vsake ribe s sterilno brizgo in vnesli v epruvete. Epruvete smo centrifugirali (5000 obratov na minuto 10 minut pri 4 stopinjah C) [29], nato pa supernatant ločili in shranili pri -20 stopinjah C.

2.4. Heat Challenge. Po 60 dneh hranjenja je bil izveden izziv toplotnega stresa v skladu z Dawood et al. [30] študija v treh izvodih. Najprej je bilo hranjenje med preskusom ustavljeno in sedem izstradanih rib na rezervoar (21 rib na zdravljenje) je bilo 48 ur zaradi toplotnega stresa v podobnih pogojih z visoko temperaturo (32 stopinj C). Za povišanje temperature do 32 stopinj C so uporabljali grelnike za akvarije, temperaturo vode pa so pogosto preverjali s prenosnimi večparametrskimi merilniki (YSI, Kitajska).

2.5. Vzorčenje krvi in ​​tkiv. Po zahtevnem testu so bile vse ribe v vsakem akvariju anestezirane z 200 mg l-1 prahu nageljnovih žbic in izbrane tri ribe na akvarij (9 rib na zdravljenje) za zbiranje vzorcev krvi. Vzorce krvi smo zbrali preko repne vene vsake ribe s sterilno brizgo in vnesli v epruvete. Epruvete so bile centrifugirane (5000 vrt/min 10 minut pri 4 stopinjah C) [29], nato pa je bil supernatant ločen in shranjen pri -20 stopinjah C.

2.6. Biokemijski test. Pred in po zahtevnih testih so glukozo, alanin aminotransferazo (ALT), aspartat aminotransferazo (AST), katalazo (CAT), glutation peroksidazo (GPx), malondialdehid (MDA) in superoksid dismutazo (SOD) testirali s komercialnimi kompleti (Pars Azmoon). , Iran). Aktivnost lizocima v serumu je bila testirana z uporabo metode Saurabha in Sahooja [31] s turbidimetrijo. Najprej smo pripravili suspenzijo Micrococcus lysodeikticus z raztapljanjem 0.2 mg ml-1 v 0.05 M natrijevega fosfatnega pufra (pH 6,2). Nato smo 50 ul seruma dodali 2 ml suspenziji Micrococcus lysodeikticus in reakcijsko zmes razdelili na 96- mikrotitrsko ploščo (Hyperion, Nemčija) in takoj izmerili začetno OD spektrofotometrično pri 450 nm. Končno OD smo izmerili po 1-urni inkubaciji reakcijske mešanice pri 24 °C. Enota aktivnosti lizocima je bila definirana kot količina vzorca, ki povzroči zmanjšanje absorbance lizocima za 0,001/min vzorca, kalibriranega s standardno krivuljo, določeno z lizocimom kokošjega beljaka (Sigma) v PBS. Aktivnost serumskega alternativnega komplementa (ACH50) je bila izmerjena na podlagi Yano et al. [32], pri katerem so bile kot tarča uporabljene kunčje rdeče krvne celice (RBC). Ravni serumskega kortizola so bile izmerjene s kompetitivno metodo ELISA z uporabo komercialnega kompleta (IBL Co., Gesellschaft für Immunchemie und Immunbiologie).

2.7. Izražanje genov. Skupna RNA ribjih jeter, zbrana po zahtevnem testu, je bila izolirana z uporabo GeneAll Kit (GeneAll Biotechnology, Seul, Koreja). Po ocenjevanju kakovosti RNA z elektroforezo agaroznih gelov smo 2 ug celotne RNA obdelali z DNazo I in uporabili za sintezo prve verige cDNA z uporabo oligo (dT) primerjev, 10 mM dNTP in reverzne transkriptaze v skladu s proizvajalčevimi navodili. navodila (Thermo Scientific, Nemčija). Gensko specifični primerji so bili omenjeni za analizo RT-PCR v tabeli 2. Gen beta-aktina je bil uporabljen kot notranja kontrola. qPCR je bil izveden z RealQ Plus Master Mix Green (AMPLIQONIII) po navodilih proizvajalca. Reakcijo, sestavljeno iz 10 ul zelene mešanice SYBR, 1 ul razredčene cDNA, 0,5 ul vsakega primerja in vode Millipore smo dodali do končnega volumna 20 ul. Za reakcijo smo uporabili naslednji program: 10 minut pri 95 stopinjah C, denaturacija pri 95 stopinjah C za 10 sekund, žarjenje pri 60 stopinjah C za 40 sekund in podaljšanje pri 72 stopinjah C za 35 sekund za 40 ciklov. Raven RNA je bila izračunana na podlagi metode 2-ΔΔCT [33]. Za vsak poskus so bile izvedene tri biološke ponovitve.

2.8. Statistična analiza. Podatki (povprečje ± SD) so bili analizirani z enosmerno analizo variance (ANOVA), ki ji je sledil Duncanov test večkratnega razpona za primerjavo povprečij med skupinami. Pred analizami so bili podatki ocenjeni glede normalnosti in homogenosti variance s Shapiro-Wilkovim testom oziroma Levenovim testom. Dvosmerna ANOVA je bila uporabljena tudi za testiranje učinkov prehrane, toplotnega stresa in njunih interakcij. Statistične analize so bile izvedene z uporabo programske opreme SPSS različice 23 in P < 0:05 je bila sprejeta stopnja pomembnosti.

3. Rezultati

3.1. Učinkovitost rasti. V uspešnosti rasti so bile pomembne razlike, najvišje FBW, WG, SGR in FI pa so opazili v T2 in T3 (tabela 3, P < 0:05). FCR se je znatno zmanjšal pri kvercetinu, hranjenem z ribami (tabela 3, str< 0:05).

3.2. Serumski imunski odziv. Aktivnost lizocima in ACH50 se je izjemno zmanjšala, ko so bili navadni krapi izpostavljeni toplotnemu stresu, najnižjo aktivnost pa so opazili pri ribah, hranjenih s kontrolno dieto, in ribah, hranjenih z dopolnjeno prehrano, kar predstavlja najvišje ravni (tabela 4, P < 0:05). Pred in po toplotnem stresu so različne ravni kvercetina znatno povečale ACH50 in aktivnost lizocima, največje aktivnosti pa so opazili pri ribah, hranjenih s 400 (T2) in 600 (T3) mg/kg kvercetina (tabela 4, P <0:05).

3.3. Antioksidativni encimi. Katalaza, MDA in GPx so bile znatno povišane pri ribah, izpostavljenih toplotnemu stresu, pri čemer je najvišja raven pri ribah, hranjenih s kontrolno dieto, in ribah, hranjenih z dopolnjeno prehrano s kvercetinom, pokazala najnižje vrednosti (tabela 4, P < {{3} }:05). Ravni SOD so se znatno zmanjšale pri ribah, ki so bile izpostavljene toplotnemu stresu (če so bile vse terapije kombinirane); prav tako je obstajala pomembna razlika v ravneh SOD med zdravljenji pred in po toplotnem izzivu, najvišja raven pa je bila zabeležena v T2 v obeh fazah (tabela 5, P <0:05).

3.4. Parametri napetosti. Pred in po toplotnem stresu so bile ravni glukoze in kortizola znatno višje v kontrolni skupini v primerjavi z zdravljenjem z dodatki kvercetina (tabela 6, P < 0:05). Izpostavljenost navadnega krapa visokim temperaturam je povzročila znatno povečanje AST in ALT pri vseh zdravljenjih, vendar so imele ribe, hranjene s 600 mg/kg kvercetina, najnižje ravni (tabela 6, P < 0:05). Poleg tega so pred in po izzivu opazili najvišjo in najnižjo aktivnost ALT in AST v kontrolni skupini oziroma T3 (tabela 6, P <0:05).

3.5. Izražanje genov. Po izpostavljenosti toplotnemu stresu je bila ekspresija GPx (slika 1(a)) izrazito povečana, najvišje ravni RNA pa so opazili pri ribah, hranjenih s 400 mg/kg kvercetina (P < 0: 05). Za GR (slika 1 (b)) in IL8 (slika 1 (c)) niso opazili izrazitih učinkov, vendar so bili večji pri ribah, hranjenih s krmo, dopolnjeno s kvercetinom (P > 0:05).

Ekspresija gena za lizocim je bila izrazito višja pri navadnem krapu, hranjenem s krmo, dopolnjeno s kvercetinom, kot v kontrolni skupini (slika 1 (d)).

4. Razprava

V tej študiji je vključitev kvercetina v prehrano znatno izboljšala rast in učinkovitost krme navadnega krapa. V skladu s tem so bili najboljši WG, SGR, FI in FCR doseženi pri ribah, hranjenih s 400 in 600 mg/kg dietami, dopolnjenimi s kvercetinom. Prejšnje ugotovitve so pokazale, da je prehranski kvercetin pozitivno vplival na WG, SGR in FCR pri nilski tilapiji (Oreochromis niloticus) [34], amurju (Ctenopharyngodon idella) () in navadnem krapu [13]. Spodbujevalni učinek kvercetina na rast rib je lahko povezan z njihovo večjo učinkovitostjo pri spodbujanju izločanja prebavnih encimov, kot so proteaza, amilaza in lipaza [13, 34], zmanjševanje številčnosti škodljivih črevesnih bakterij in spodbujanje populacije koristnih bakterij [35], izboljšanje funkcije črevesne pregrade in izboljšanje površine črevesnih resic in vrčastih celic [36].

Aktivnost ACH50 je pomemben parameter, ki je koristil pri oceni humoralnega nespecifičnega imunskega odziva pri ribah. V različnih stresnih situacijah, ki so jim ribe izpostavljene, poročajo o znižanju ravni ACH50 v serumu. V tej študiji se je serumska aktivnost ACH50 znatno povečala v skupini, ki je prejemala odmerke 400 in 600 mg/kg kvercetina pred stresom in po stresu v primerjavi s kontrolno skupino. Skratka, ker so jetra glavni vir proteinov komplementa, je mogoče povečanje ravni ACH50 pojasniti z izboljšanjem zdravja in delovanja jeter. Naši rezultati v smislu povečanja aktivnosti ACH50 se popolnoma ujemajo z ugotovitvami prejšnjih študij običajnih diet, hranjenih s krapi, ki vsebujejo 200 ali 800 mg/kg kvercetina [16]. Poleg tega so rezultati v skladu s prejšnjimi študijami, ki kažejo, da eksogeni krmni dodatki uspešno preprečujejo zmanjšanje aktivnosti komplementa po stresu [37, 38].

Lizocim je pomemben protimikrobni peptid prirojenega imunskega sistema, ki napade patogene. Pri kontrolni skupini rib, ki so bile 48 ur izpostavljene 32 stopinjam C, so ugotovili znatno zmanjšanje aktivnosti lizocima v serumu. Podobno zmanjšanje aktivnosti serumskega lizocima pri višjih temperaturah so opazili pri nilski tilapiji Oreochromis niloticus [39]. V tej študiji je bila aktivnost serumskega lizocima znatno povečana v vseh skupinah, ki so prejemale kvercetin, pred stresom in po stresu v primerjavi s kontrolno skupino. To nakazuje, da dodatek kvercetina zavira imunosupresijo po stresu po visoki temperaturi.

Vzporedno z našo študijo so se ravni lizocima povečale tudi pri nekaterih vrstah rib, hranjenih s krmo, ki vsebuje kvercetin. Na primer, C. carpio, hranjen z dieto, ki je vsebovala 200 ali 800 mg kg-1 kvercetina, je pokazal povečanje ravni lizocima v serumu, črevesju in sluzi [16]. Wang et al. [18] so dodali 0,01, 0,1, 1, 10, 100 in 1000 ug/l kvercetina v vodo za vzrejo cebric (Danio rerio) in poročali, da je bila aktivnost serumskega lizocima znatno višja v skupini z 1 ug/l kvercetina kot v kontrolna skupina.

Dobro je znano, da se glukoza v serumu uporablja kot nespecifični indeks stresa v študijah rib [40, 41]. V tej študiji so dodatki kvercetina znatno zmanjšali vsebnost glukoze v serumu v skupini prednapetosti. Na voljo je nekaj poročil o hipoglikemičnih učinkih kvercetina [42, 43]. To je bilo podprto v nedavni študiji, kjer kvercetin zmanjša raven glukoze v serumu pri navadnem krapu [16]. Vendar pa so za razliko od naše študije ravni glukoze v serumu pri srebrnem somu, kraljici Rhamdia [12] in oradi, Megalobrama amblycephala [44], hranjeni s krmo, ki je vsebovala kvercetin, ostale nespremenjene.

Superoksid dismutaza (SOD), katalaza (CAT) in glutation peroksidaza (GPx) so glavni encimi, ki lovijo reaktivne kisikove vrste (ROS) in razstrupljajo H2O2 oziroma hidroperokside. Poleg tega se malondialdehid (MDA) pogosto uporablja kot biomarker peroksidacije lipidov. Naši rezultati v smislu povečanja SOD in zmanjšanja aktivnosti MDA se popolnoma ujemajo z ugotovitvami prejšnjih študij pri navadnem krapu, C. carpio, krmljenih dietah, vključenih z 800 mg/kg kvercetina. Podobno Ibrahim et al. [45] so poročali o povečanem SOD in GPx ter zmanjšanem MDA učinku kvercetina pri nilski tilapiji Oreochromis niloticus.

Poleg tega je bila ekspresija mRNA SOD [46] ter ravni aktivnosti SOD in CAT v možganih, škrgah, jetrih in/ali mišicah [12] višje pri ribah, hranjenih s kvercetinsko dieto. Parametri SOD, CAT, MDA in GPx igrajo pomembno vlogo pri odzivu antioksidantov v različnih stresnih pogojih, kot so pesticidi [47], kovine [48], visoke temperature [49, 50], hipoksija [50] in nizke temperature [51]. Vendar ni na voljo nobene študije o učinkih kvercetina na antioksidativno sposobnost pri ribah v pogojih visokotemperaturnega stresa. V tej študiji znižane ravni CAT, MDA in GPx ter povečane ravni SOD, opažene v stresnih razmerah po visoki temperaturi, kažejo na pomemben antioksidativni učinek kvercetina. Podobno so pri M. rosenbergii pod visokotemperaturnim stresom poročali o prehranskem izvlečku antrakinona, zlasti pri 0.1- 0.2-odstotni ravni, znatno povečanem SOD in znižanju ravni MDA v jetrih [25].

Aktivnosti serumskih encimov so sprejete kot pomembni indikatorji poškodbe tkiva; na primer, AST in ALT sta indikatorja poškodbe jeter, laktat dehidrogenaza (LDH) pa za poškodbe jeter ali mišic pri ribah [52]. Zato je mogoče povečanje teh encimov v krvi pripisati poškodbam jeter in mišičnega tkiva. Prejšnje študije so pokazale, da sta se serumski aktivnosti ALT in AST zmanjšali, ko so bile ribe hranjene s kvercetinom [13, 16]. V literaturi doslej ni bilo najdenih študij o učinkih kvercetina pri visokotemperaturnem stresu na ravni encimov v ribjem serumu. Vendar [25] poroča, da sta bili aktivnosti AST in ALT v sladkovodni kozici (M. rosenbergii), hranjeni z dieto, ki je vsebovala izvleček antrakinona iz R. officinale Bail, pod visokotemperaturnim stresom bistveno nižji kot pri kontrolnih ribah. V tej študiji sta se serumski AST in ALT (razen 200 mg/kg) zmanjšali pri ribah, hranjenih s krmo, dopolnjeno s kvercetinom, pred visokotemperaturnim stresom. Ta trend se je ohranil tudi po visokotemperaturnem stresu.

Nizke ravni glukoze v serumu pri ribah, izpostavljenih visokotemperaturnemu stresu, so lahko posledica podhranjenosti, motenj jeter in vnetij [25, 50, 53]. To je lahko povezano s povečanjem porabe glukoze v perifernih tkivih, kar je verjetno povezano s povečanjem povpraševanja po energiji, ki ga povzroča odziv na stres [54]. Podobno znižanje ravni glukoze v serumu pri višji temperaturi (21 stopinj C) so opazili pri šarenki Oncorhynchus mykiss [50]. V nasprotju z našimi ugotovitvami pa so poročali o povišanih ravneh glukoze v krvi pri oradi Wuchang, M. amblycephala, pod visokotemperaturnim stresom [26]. Ti različni rezultati so lahko povezani z razlikami v pogojih vzreje, času izpostavljenosti, vrstah rib, velikosti rib in/ali starosti.

Kortizol v krvi je eden najpomembnejših kazalcev odziva rib na toplotni stres [55]. V tej študiji so bile ravni kortizola bistveno nižje pri ribah, ki so jih pred toplotnim stresom hranile z različnimi ravnmi kvercetina. Poleg tega so ribe, hranjene s hrano, dopolnjeno s kvercetinom, pokazale znatno nižje ravni kortizola po toplotnem stresu, kar poudarja zaščitni potencial dodatka kvercetina na presnovo navadnega krapa. Podobno je nilska tilapija, hranjena z dietnim natrijevim butiratom, pokazala znižanje ravni kortizola, ko je bila izpostavljena toplotnemu stresu [30]. V tej študiji je bil kortizol med toplotnim stresom pri kvercetinu, hranjenem z ribami, znatno nižji v primerjavi s kontrolno skupino. Ti rezultati so lahko povezani s protistresnimi učinki kvercetina, ki je zaviral domeno povišanega kortizola.

V skladu s temi ugotovitvami lahko sklepamo, da je lahko kvercetin (400-600 mg/kg) koristna snov pri zdravljenju in zaščiti celic pred morebitnim oksidativnim stresom.

Razpoložljivost podatkov

Nabori podatkov, ustvarjeni in/ali analizirani med trenutno študijo, so na voljo pri ustreznih avtorjih na razumno zahtevo.

Nasprotja interesov

Avtorji izjavljajo, da niso v nasprotju interesov

Zahvala

To študijo je podprla Univerza v Zabolu (Iran) s kodo dotacije (IR-UOZ-GR-6313). To delo je delno podprla Univerza Chiang Mai.

Reference

[1] F. Wu, C. Yang, H. Wen, et al., "Izboljšanje odpornosti tilapije na stres pri nizkih temperaturah, Oreochromis niloticus: funkcionalna analiza Astragalus membranaceus," Journal of the World Aquaculture Society, vol. 50, št. 4, str. 749–762, 2019.

[2] ME Abd El-Hack, SA Abdelnour, AE Taha, et al., "Herbs as thermoregulatory agents in poultry: an overview," Science of the Total Environment, vol. 703, člen 134399, 2020.

[3] C. Liu, W. Shen, C. Hou et al., "Z nizko temperaturo povzročena variacija biokemičnih indeksov v plazmi in izražanje gena za akvagliceroporin pri velikem rumenem krokarju Larimichthys crocea," Scientific Reports, vol. 9, št. 1, str. 1–10, 2019.

[4] J. Qiang, H. Yang, H. Wang, P. Xu, Z. Qi in J. He, "Študije o biokemičnih indeksih krvi in ​​izražanju jetrne mRNA HSP70 različnih sevov tilapije, umetno okuženih s Streptococcus iniae, " Journal of Fisheries of China, vol. 36, št. 6, str. 958–968, 2012.

[5] IS Vicente, LF Fleuri, PL Carvalho et al., "Drobec pomarančne lupine izboljša antioksidativno zmogljivost in hematološki profil nilske tilapije, izpostavljene stresu, povzročenemu s toploto/raztopljenim kisikom," Aquaculture Research, vol. 50, št. 1, str. 80–92, 2019.

[6] E. Ahmadifar, M. Yousefi, M. Karimi et al., "Prednosti prehranskih polifenolov in aditivov, bogatih s polifenoli, za zdravje vodnih živali: pregled," Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, vol. 29, št. 4, str. 478–511, 2021.

[7] E. Ahmadifar, M. Eslami, N. Kalhor et al., "Učinek prehrane, obogatene z natrijevim propionatom, na rast, antioksidativno lastnost, prirojeni prilagodljivi imunski odziv in izražanje genov, povezanih z rastjo, pri kritično ogroženih beluga jeseter (Huso huso)," Fish & Shellfish Immunology, vol. 125, strani 101–108, 2022.

[8] H. Memariani, M. Memariani in A. Ghasemian, "Pregled lastnosti kvercetina proti biofilmu proti bakterijskim patogenom," World Journal of Microbiology and Biotechnology, vol. 35, št. 9. 2019.

[9] SS Baghel, N. Shrivastava, RS Baghel, P. Agrawal in S. Rajput, "Pregled kvercetina: antioksidativne in protirakave lastnosti," World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, vol. 1, št. 1, str. 146–160, 2012.

[10] M. Lesjak, I. Beara, N. Simin, et al., "Antioksidantne in protivnetne aktivnosti kvercetina in njegovih derivatov," Journal of Functional Foods, vol. 40, str. 68–75, 2018.

[11] TS Pês, EM Saccol, É. P. Londero et al., "Zaščitni učinek kvercetina proti oksidativnemu stresu, ki ga povzroča oksitetraciklin v mišicah srebrnega soma," Aquaculture, vol. 484, str. 120–125, 2018.

[12] TS Pês, EM Saccol, GM Ourique et al., "Kvercetin v prehrani srebrnega soma: učinki na status antioksidantov, krvne parametre in izražanje hipofiznega hormona," Aquaculture, vol. 458, str. 100–106, 2016.

[13] H. Ghafarifarsani, SH Hoseinifar, S. Javahery, M. Yazici in H. Van Doan, "Učinkovitost rasti, biokemični parametri in prebavni encimi pri navadnem krapu (Cyprinus carpio), hranjenem s poskusnimi dietami, dopolnjenimi z vitaminom C, timijanom eterično olje in kvercetin," Italian Journal of Animal Science, vol. 21, št. 1, str. 291–302, 2022.

[14] SW Zhai in SL Liu, "Učinki dietetskega kvercetina na rast, raven lipidov v serumu in telesno sestavo tilapije (Oreochromis niloticus)," Italian Journal of Animal Science, vol. 12, št. 4, člen e85, 2013.

[15] Z. Xu, X. Li, H. Yang, G. Liang, B. Gao in X. Leng, "Prehranski kvercetin je izboljšal rast, antioksidacijo in kakovost mesa amurja (Ctenopharyngodon idella)," Journal Svetovnega združenja za ribogojstvo, vol. 50, št. 6, str. 1182–1195, 2019.

For more information:1950477648nn@gmail.com