Kopenski mikroorganizmi: Celične tovarne bioaktivnih molekul z aplikacijami za zaščito kože 4. del

May 04, 2023

8. Sklepi

Naravno pridobljene molekule se tradicionalno uporabljajo v izdelkih za zaščito kože (tabela 1, popis CosIng). Posledično se naravne spojine, izolirane in/ali proizvedene z biotehnološkimi orodji iz mikroorganizmov, že uporabljajo za dermatološke namene v topikalnih kozmetičnih formulacijah. Ti izdelki lahko estetsko izboljšajo videz kože, lahko pa tudi preprečijo in/ali zdravijo kožne motnje, povezane s staranjem. Poleg "uveljavljenih" molekul obstaja več majhnih molekul in/ali encimov, pridobljenih iz mikroorganizmov, ki imajo velik potencial za uporabo v kozmetiki ali kozmetičnih formulacijah (tabela 1).

Glede na ustrezne študije je cistanča pogosta rastlina, ki je znana kot "čudežna rastlina, ki podaljšuje življenje". Njegova glavna sestavina jecistanozid, ki ima različne učinke kot nprantioksidant, protivnetno, inspodbujanje imunske funkcije. Mehanizem med cistančo inkožobeljenjeleži v antioksidativnem učinku cistančeglikozidi. Melanin v človeški koži nastaja z oksidacijo tirozina, ki jo kataliziratirozinaza, oksidacijska reakcija pa zahteva sodelovanje kisika, zato radikali brez kisika v telesu postanejo pomemben dejavnik, ki vpliva na proizvodnjo melanina. Cistanche vsebuje cistanozid, ki je antioksidant in lahko zmanjša nastajanje prostih radikalov v telesu.zaviranjemelaninproizvodnja.

cistanche pros and cons

Kliknite na Cistanche Powder Bulk

Za več informacij:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Zanimivo je, da je več biomolekul, ki so že vključene v evropski seznam sprejetih kozmetičnih sestavin (CosIng inventory) [14], registriranih za eno od svojih bioloških aktivnosti, vendar se v kozmetičnih aplikacijah uporabljajo drugače. Značilen primer je kojična kislina, ki je registrirana kot "antioksidant", medtem ko je glavna uporaba v kozmetiki njena močna antitirozinazna aktivnost in s tem njena uporaba kot sredstvo za beljenje kože (Tabela 1).

cistanche flaccid

Glede na ogromno mikrobno biotsko raznovrstnost in mikrobno prilagoditev na skoraj vsako okolje na zemlji je pričakovati, da mikrobi predstavljajo izjemen inventar zelo raznolikih strukturnih ogrodij biomolekul s potencialnimi zaščitnimi aktivnostmi kože. Čeprav so se raziskave morskega okolja začele ujemati pozneje kot kopenskega okolja, imamo več primerov, ko kozmetične aplikacije in patenti podpirajo mikroorganizme, pridobljene iz morja. Kot je bilo omenjeno v primeru MAA, znanih po svoji foto-zaščitni aktivnosti, so vključeni v več patentov za naravne UV filtre. Vendar jih je večina razvitih z mikroorganizmi iz morskega okolja (72,2 odstotka), medtem ko patenti, razviti na kopenskih in sladkovodnih mikroorganizmih, niso presegli 21,4 odstotka oziroma 2,4 odstotka [135]. Ta študija odraža, da je bilo do danes v nekaterih primerih kopensko okolje zanemarjeno.

which cistanche is best

Na splošno, ob upoštevanju, da večina svetovne mikrobne kopenske biotske raznovrstnosti ostaja večinoma neraziskana in da mikroorganizmi ponujajo trajnosten, razmeroma poceni in hiter proizvodni proces, ostajamo prepričani, da bodo sistematične raziskave v kratkem razkrile dodatne mikroorganizme, ki jih je mogoče uporabiti kot celične tovarne za proizvodnjo biomolekul z visoko dodano vrednostjo z uporabo v kozmetični industriji kot aktivnih sestavin.
Avtorski prispevki:Pri pripravi tega članka so sodelovali vsi avtorji.
Financiranje:To delo je finančno podprla EU v okviru projekta COSMETICS (FP7-PEOPLE-Industry-Academia Partnerships and Pathways), pogodba o dodelitvi sredstev št. 612276.

Nasprotja interesov:Avtorji izjavljajo, da ni navzkrižja interesov.

cistanche lost empire

Okrajšave

ABTS 2,20 -azino-bis-3-etilbenztiazolin-6-sulfonska kislina
CALB Candida antarctica lipaza B
CAGR: skupna letna stopnja rasti
Suha teža celice CDW
DPPH 2,2-difenil-1-pikrilhidrazil
EPS eksopolisaharidi
HQ hidrokinon
LTA lipoteihojska kislina
MAA mikosporinu podobne aminokisline
Minimalna inhibitorna koncentracija MIC
-PGA poli- -glutaminska kislina
RNS reaktivne vrste dušika
ROS reaktivne kisikove vrste
Zaščitni faktorji za zaščito pred soncem SPF
SSR sončno simulirano sevanje
SOD superoksid dismutaze
UVA ultravijolično A

UVB ultravijolično B

Reference

1. Ma, T.; Deng, Z.; Liu, T. Mikrobne proizvodne strategije in uporaba likopena in drugih terpenoidov. World J. Microbiol. Biotehnologija. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; Barone, G.; Marcellini, F.; Dell'Anno, A.; Danovaro, R. Molekule, pridobljene iz morskih mikrobov, in njihova potencialna uporaba v kozmetičnih in kozmetičnih izdelkih. Mar. Drugs 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Lobanovska, M.; Pilla, G. Odkritje penicilina in odpornost na antibiotike: lekcije za prihodnost? J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.

4. Raja, A.; Prabakarana, P. Actinomycetes, and Drug-An Pregled. Am. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [CrossRef]

5. Berdy, J. Bioaktivni mikrobni metaboliti. J. Antibiot. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. Ferreira, A.; Vecino, X.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, AB; Rodrigues, LR Nove kozmetične formulacije, ki vsebujejo biosurfaktant iz Lactobacillus paracasei. Colloid Surf. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Argyropoulou, A.; Aligiannis, N.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL Naravne spojine z delovanjem proti staranju. Nat. Prod. Rep. 2013, 30, 1412–1437. [CrossRef]

8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. Molekularni mehanizmi UVB-induciranega staranja dermalnih fibroblastov in njegov pomen za fotostaranje človeške kože. Exp. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. Ciljanje na starajoče se celice: možne posledice za odložitev staranja kože: mini pregled. Gerontologija 2016, 62, 513–518.

10. Trougakos, IP; Sesti, F.; Tsakiri, E.; Gorgoulis, VG. Neencimske posttranslacijske modifikacije beljakovin in deregulacija mreže proteostaze pri karcinogenezi. J. Proteomika 2013, 92, 274–298.

11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; Fokialakis, N.; Trougakos, IP Kemopreprečevanje raka z aktivacijo proteostatskih modulov. Rak Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. Poročila o tržnih raziskavah. (dostopano 22. avgusta 2017).

13. Hyde, KD; Bahkali, AH; Moslem, MA Glive – nenavaden vir za kozmetiko. Glivični potapljači. 2010, 43, 1–9. [CrossRef]

14. Inventar CosIng. Dostopno na spletu: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (dostop 22. 3. 2018).

15. Čaj, TT; Zakon, YC; Wong, FC; Kim, SK Odkritje antioksidantnih peptidov iz užitnih morskih nevretenčarjev s pomočjo encimov: pregled. Mar. Drugs 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG Mitohondriji sesalcev in staranje: posodobitev. Celica. Metab. 2017, 25, 57–71. [CrossRef]

17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. Naravni antioksidanti v kozmetiki. Žrebec Nat. Prod. Chem. 2013, 40, 485–505.

18. Abramovič, H.; Grobin, B.; Ulrik, NP; Cigi´c, B. Ustreznost in standardizacija in vitro antioksidativnih testov: ABTS, DPPH in Folin–Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [CrossRef]

19. Huang, WY; Cai, YZ; Xing, J. Potencialni vir antioksidantov: endofitne glive iz zdravilnih rastlin. Econ. Bot. 2007, 61, 14–30. [CrossRef]

20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, T.; Hulikere, MM; Appaiah, KAA Molekularno profiliranje in antioksidant kot tudi protibakterijski potencial endofitne glive, ki proizvaja polifenol - Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Mikologija 2017, 8, 28–38. [CrossRef]

21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV Antioksidativne lastnosti Spirulina (Arthospira) platensis, gojene pri različnih temperaturah in dušikovih režimih. Braz. Arh. Biol. Technol. 2007, 50, 161–167. [CrossRef]

22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Antioksidativna aktivnost mikroalge Chlorella vulgaris, gojene v posebnih pogojih. Boll. Chim. Kmetija. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, ES; Shanab, SMM Antiradikalne in antioksidativne aktivnosti različnih izvlečkov Spirulina platensis proti testom radikalov DPPH in ABTS. Indijski J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [CrossRef]

24. Goiris, K.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; Noten, B.; De Paepe, D.; GJ, B.; De Cooman, L. Odkrivanje flavonoidov v mikroalgah iz različnih evolucijskih linij. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [CrossRef]

25. Jerez-Martel, I.; García-Poza, S.; Rodríguez-Martel, G.; Rico, M.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Fenolni profil in antioksidativna aktivnost surovih izvlečkov iz sevov mikroalg in cianobakterij. J. Food Qual. 2017, 4, 1–8. [CrossRef]

26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Antioksidativne lastnosti in vsebnost polifenolov v kopenskih cianobakterijah. 3 Biotehnologija. 2017. [CrossRef]

27. Liu, Y.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, H.; Zhang, D.; Han, X. Izolacija in identifikacija endofitov, ki proizvajajo resveratrol, iz grozdja Cabernet Sauvignon. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Ši, J.; Zeng, Q.; Liu, Y.; Pan, Z. Alternaria sp. MG1, gliva, ki proizvaja resveratrol: izolacija, identifikacija in optimalni pogoji gojenja za proizvodnjo resveratrola. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA Lastnosti resveratrola proti staranju: pregled in poročilo o močni novi antioksidativni formulaciji za nego kože. J. Cosmet. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Y. Biokonverzija resveratrola z uporabo mirujočih celic gensko nespremenjene Alternaria sp. Biotehnologija. Appl. Biochem. 2013, 60, 236–243. [CrossRef]

31. An, SM; Koh, JS; Boo, YC P-kumarinska kislina ne zavira samo aktivnosti človeške tirozinaze in vitro, ampak tudi melanogenezo v celicah, izpostavljenih UVB. fitoter. Res. 2010, 24, 1175–1180.

32. Lourith, N.; Kanlayavattanakul, M. Antioksidativne aktivnosti in fenoli semena Passiflflora edulis, pridobljeni iz ostankov proizvodnje soka. J. Oleo. Sci. 2013, 62, 235–240. [CrossRef]

33. Lopez-Burillo, S.; Tan, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, LC; Reiter, RJ Melatonin, ksanturenska kislina, resveratrol, EGCG, vitamin C in alfa-lipoična kislina različno zmanjšajo oksidativno poškodbo DNK, ki jo povzročijo Fentonovi reagenti: študija njihovih posameznih in sinergijskih učinkov. J. Pinealna žleza. Res. 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]

34. Satooka, H.; Kubo, I. Resveratrol kot zaviralec tipa kcat za tirozinazo: Potenciran zaviralec melanogeneze. Bioorg. Med. Chem. 2012, 20, 1090–1099. [CrossRef]

35. Li, M.; Kildegaard, KR; Chen, Y.; Rodriguez, A.; Borodina, I.; Nielsen, J. De novo proizvodnja resveratrola iz glukoze ali etanola z inženirstvom Saccharomyces cerevisiae. Metab. inž. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. Lim, CG; Fowler, ZL; Hueller, T.; Schaeffer, S.; Koffffas, MA Visoko donosna proizvodnja resveratrola v inženirstvu Escherichia coli. Appl. Okolje. Microbiol. 2011, 77, 3451–3460. [CrossRef]

38. Sydor, T.; Schaeffer, S.; Boles, E. Znatno povečanje proizvodnje resveratrola z rekombinantnimi industrijskimi sevi kvasovk z uporabo bogatega medija. Appl. Okolje. Microbiol. 2010, 76, 3361–3363. [CrossRef]

38. Balestrazzi, A.; Bonadej, M.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Bakterije, povezane z listi, iz transgenega belega topola, ki proizvajajo resveratrolu podobne spojine: izolacija, molekularna karakterizacija in ocena tolerance na oksidativni stres. Lahko. J. Microbiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; Zhang, Q.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, A.-L.; Gao, J.-M. Sekundarni metaboliti iz endofitne Botryosphaeria dothidea Melia azedarach in njihove protiglivične, antibakterijske, antioksidativne in citotoksične aktivnosti. J. Agric. Food Chem. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. Mou, Y.; Meng, J.; Fu, X.; Wang, X.; Tian, ​​J.; Wang, M.; Peng, Y.; Zhou, L. Protimikrobne in antioksidativne aktivnosti ter učinek dodatka 1-heksadecena na izkoristek palmarumicina C2 in C3 v tekoči kulturi endofitne glive Berkleasmium sp. Dzf12. Molekule 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. Antioksidativna vloga dodatkov glutationa in N-acetil-cisteina ter oksidativni stres, ki ga povzroča vadba. J. Int. Soc. Športna prehrana 2005, 2, 38–44. [CrossRef]

42. Sonthalia, S.; Daulatabad, D.; Sarkar, R. Glutation kot sredstvo za beljenje kože: dejstva, miti, dokazi in polemike. Indijski J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [CrossRef]

43. Fei, L.; Wang, Y.; Chen, S. Izboljšana proizvodnja glutationa z izražanjem genov v Pichia pastoris. Bioproces. Biosist. inž. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]

44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, H.; Li, Z.; Ye, Q. Heterologna ekspresija gena gshF v različnih vektorskih sistemih v Escherichia coli za povečano proizvodnjo glutationa. J. Biotechnol. 2015, 214, 63–68. [CrossRef]

45. Palozza, P.; Krinsky, NI Astaksantin in kantaksantin sta močna antioksidanta v membranskem modelu. Arh. Biochem. Biophys. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Yamamoto, K.; Hara, KY; Morita, T.; Nišimura, A.; Sasaki, D.; Ishii, J. Povečanje proizvodnje astaksantina v Xanthophyllomyces dendrorhous z učinkovito metodo za popolno izbris genov. Microb. Dejstvo o celici. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA Vpliv pogojev kulture na rast zelene alge - Haematococcus pluvialis in proizvodnjo astaksantina. Acta Physiol. Rastlina. 2002, 24, 323–329. [CrossRef]

48. Mueller, L.; Boehm, V. Antioksidativna aktivnost beta-karotenskih spojin v različnih in vitro testih. Molekule 2011, 16, 1055–1069. [CrossRef]

49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, X.; Hu, M.; Deng, Z. Ciljni inženiring in povečanje prekomerne proizvodnje likopena v Escherichia coli. Proces. Biochem. 2015, 50, 341–346. [CrossRef]

50. Nelis, HJ; De Leenheer, A. P, Ponovna raziskava Brevibacterium sp. sev KY-4313 kot vir kantaksantina. Appl. Okolje. Microbiol. 1989, 55, 2505–2510.

51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. Antioksidativna aktivnost karotenoidnega luteina in vitro in in vivo. Indijski J. Exp. Biol. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodríguez, H.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG Vsebnost karotenoidov v mikroalgah klorofitov: dejavniki, ki določajo kopičenje luteina v Muriellopsis sp. (Chlorophyta). J. Biotechnol. 2000, 76, 51–59. [CrossRef]

53. Venugopalan, V.; Tripathi, SK; Nahar, P.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Karakterizacija izomerov kantaksantina, izoliranih iz nove zemlje Dietzia sp. in njihove antioksidativne aktivnosti. J. Microbiol. Biotehnologija. 2013, 23, 237–245. [CrossRef]

54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Ocena in vitro antioksidativne moči eksopolisaharida iz endofitnega Fusarium solani SD5. Int. J. Biol. Macromol. 2013, 53, 62–66. [CrossRef]

55. Zheng, LP; Zou, T.; Ma, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ Antioksidant in aktivnost zaščite pred poškodbami DNA eksopolisaharidov iz endofitne bakterije Bacillus cereus SZ1. Molecules 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Liu, J.; Luo, J.; Ja, H.; Sonce, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Proizvodnja, karakterizacija in antioksidativne aktivnosti in vitro eksopolisaharidov iz endofitne bakterije Paenibacillus polymyxa EJS-3. Ogljikovi hidrati. Polym. 2009, 78, 275–281. [CrossRef]

57. Liu, J.; Luo, J.; Ja, H.; Sonce, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Optimizacija medija in strukturna karakterizacija eksopolisaharidov iz endofitne bakterije Paenibacillus polymyxa EJS-3. Ogljikovi hidrati. Polym. 2010, 79, 206–213. [CrossRef]

58. Xiao, R.; Zheng, Y. Pregled zunajceličnih polimernih snovi mikroalg (EPS) in njihove uporabe. Biotehnologija. Adv. 2016, 34, 1225–1244. [CrossRef]

59. Chen, Y.; Mao, W.; Tao, H.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Strukturna karakterizacija in antioksidativne lastnosti eksopolisaharida, ki ga proizvaja mangrova endofitna gliva Aspergillus sp. Y16. Bioresour. Technol. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; Sassaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, FO; Gorin, PA; Iacomini, M. Kulturni pogoji za proizvodnjo kislega eksopolisaharida z bakterijo Burkholderia tropica, ki veže dušik. Lahko. J. Microbiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. Trabelsi, L.; Chaieb, O.; Mnari, A.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. Delna karakterizacija ter antioksidativne in antiproliferativne aktivnosti vodnih zunajceličnih polisaharidov iz termofilnih mikroalg Graesiella sp. BMC dopolnilo. Altern. Med. 2016. [CrossRef]

62. Romay, C.; Gonzalez, R.; Ledon, N.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-fikocianin: biliprotein z antioksidativnimi, protivnetnimi in nevroprotektivnimi učinki. Curr. Protein Pept. Sci. 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. Tasar, OC; Erdal, S.; Taskin, M. Proizvodnja hitozana s psihotolerantnim Rhizopus oryzae v nesterilnih pogojih odprte fermentacije. Int. J. Biol. Macromol. 2016, 89, 428–433. [CrossRef]

64. Asachi, R.; Karimi, K. Izboljšana proizvodnja etanola in hitozana iz pšenične slame z Mucor indicus z minimalno porabo hranil. Proces. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [CrossRef]

65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; Šarmila, K.; Kalaiselvam, M.; Raffiffiffi, SM Proizvodnja hitozana iz endolitskih gliv, izoliranih iz okolja mangrov, in njegova antagonistična aktivnost. azijski pak. J. Trop. Biomed. 2012, 2, 140–143. [CrossRef]

66. Ordonñez, L.; Garciía, J.; Bolanños, G. Proizvodnja hitina in kompleksov hitin-glukan iz biomase Aspergillus niger z uporabo podkritične vode. V zborniku Ibero-ameriške konference o superkritičnih tekočinah, Cartagena, Kolumbija, 1.–5. april 2013.

67. Guo, J.; Rao, Z.; Yang, T.; Man, Z.; Xu, M.; Zhang, X. Visoka proizvodnja melanina z novim izolatom Streptomyces kathirae. FEMS Microbiol. Lett. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. Tarangini, K.; Mishra, S. Proizvodnja melanina z izolatom mikrobov v tleh na ekstraktu sadnih odpadkov: dvostopenjska optimizacija ključnih parametrov. Biotehnologija. Rep. 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. Beckstead, AA; Zhang, Y.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, E.; Foreman, CM Ultrahitra deaktivacija bakterijskega pigmenta violaceina v vzburjenem stanju. J. Phys. Chem. 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. Ahmad, WA; Jusof, Nova Zelandija; Nordin, N.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Proizvodnja in karakterizacija violaceina z lokalno izolirano Chromobacterium violaceum, gojeno v kmetijskih odpadkih. Appl. Biochem. Biotehnologija. 2012, 167, 1220–1234. [CrossRef]

71. Wang, H.; Jiang, P.; Lu, Y.; Ruan, Z.; Jiang, R.; Xing, X.-H. Optimizacija pogojev gojenja za proizvodnjo violaceina z novim sevom Duganella sp. B2. Biochem. inž. J. 2009, 44, 119–124. [CrossRef]

72. Pathak, J.; Sonker, AS; Richa, R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Preverjanje in delno čiščenje fotozaščitnega pigmenta scitonemina iz cianobakterijskih skorj, ki živijo na zgodovinskih spomenikih v in okoli Varanasija v Indiji. Microbiol. Res. 2017. [CrossRef]

73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; On, S.; Yan, X. Določanje oksidiranega scitonemina v občini Nostoc Vauch, gojenega v različnih pogojih s tekočinsko kromatografijo visoke ločljivosti v kombinaciji s trojno kvadrupolno masno spektrometrijo. J. Appl. Phycol. 2013, 25, 1001–1007. [CrossRef]

74. Nakashima, T.; Anzai, K.; Kuwahara, N.; Komaki, H.; Miyadoh, S.; Harayama, S. Fizikalno-kemijske značilnosti inhibitorja tirozinaze, ki ga proizvaja Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. Biol. Pharm. Bik. 2009, 32, 832–836. [CrossRef]

75. Kurbanoglu, EB; Ozdal, M.; Ozdal, OG; Algur, OF Izboljšana proizvodnja prodigiozina s Serratia marcescens MO-1 z uporabo peptona iz ovnovega roga. Braz. J. Microbiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. Borič, M.; Danevčič, T.; Stopar, D. Prodigiozin iz Vibrio sp. DSM 14379; nov UV-zaščitni pigment. Microb. Ecol. 2011, 62, 528–536. [CrossRef]

77. Lovrenc, KP; Gacesa, R.; Dolgo, PF; Young, AR Molekularna fotozaščita človeških keratinocitov in vitro z naravno prisotnim mikosporinu podobnim aminokislinskim politenom. Br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [CrossRef]

79. Rastogi, RP; Incharoensakdi, A. Karakterizacija spojin za UV-pregledovanje, mikosporinu podobnih aminokislin in scitonemina v cianobakteriji Lyngbya sp. CU2555. FEMS Microbiol. Ecol. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. Libkind, D.; Moline, M.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, M. Filogenetska porazdelitev glivičnega ciklosporina znotraj Pucciniomycotina (Basidiomycota). Kvas (Chichester, Anglija) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

81. Kogej, T.; Gostinčar, Č.; Volkmann, M.; Gorbushina, AA; Gunde-Cimerman, N.; Kogej, T.; Gorbushina, AA Mikosporini v ekstremofilnih glivah - Novi komplementarni osmoliti? Okolje. Chem. 2006, 3, 105–110. [CrossRef]

81. Wei, S.; Xu, N.; Ji, Z. Identifikacija kojične kisline, ki proizvaja Aspergillus afflatus F52. Acta Microbiol. greh 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA Študije kulturnih razmer o proizvodnji kojične kisline z Aspergillus parasiticus. Int. J. Agric. Biol. 2006, 8, 468–473.

83. Mohamad, R.; Ariffff, AB Biotransformacija različnih virov ogljika v kojično kislino s celičnim encimskim sistemom A. afflatus Link 44-1. Biochem. inž. J. 2007, 35, 203–209. [CrossRef]

84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Večnamensko in možno UV-zaščito kože, (3R)-5-hidroksimelein, ki ga proizvaja endolitska gliva, izolirana iz Parmotrema austrosinense. Molecules 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Robledo, A.; Aguilera-Carbo, A.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Y.; Aguilar, CN Proizvodnja elagične kisline z Aspergillus niger pri fermentaciji ostankov granatnega jabolka v trdnem stanju. J. Ind. Microbiol. Biotehnologija. 2008, 35, 507–513. [CrossRef]

86. Smith, WP Učinki lokalne L (plus) mlečne kisline in askorbinske kisline na beljenje kože. Int. J. Cosmet. Sci. 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Presnova ksiloze v glivi Rhizopus oryzae: učinek rasti in dihanja na proizvodnjo L plus mlečne kisline. J. Ind. Microbiol. Biotehnologija. 2008, 35, 569–578. [CrossRef]

88. Shih, IL; Van, YT Proizvodnja poli-(gama-glutaminske kisline) iz mikroorganizmov in njene različne uporabe. Bioresour. Technol. 2001, 79, 207–225. [CrossRef]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW Možen mehanizem delovanja azelaične kisline v človeški povrhnjici. Arh. Dermatol. Res. 1990, 282, 168–171. [CrossRef]

91. Balina, LM; Graupe, K. Zdravljenje melazme je 20-odstotna azelaična kislina v primerjavi s 4-odstotno hidrokinonsko kremo. Int. J. Dermatol. 1991, 30, 893–895. [CrossRef]

91. Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Identifikacija inhibitorjev tirozinaze v kulturah Pityrosporum in njihov melanocitotoksični učinek. Pigment. Celica 1979, 4, 234–243.

92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. Encimsko katalizirana sinteza sukcinata vitamina E z uporabo kemično modificiranega nikogar-435. brada. J. Chem. inž. 2011, 19, 135–139. [CrossRef]

93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Primerjalne študije o izolaciji membranske lipoteihojske kisline iz fermenta Lactobacillus. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.

94. Tokiwa, Y.; Kitagawa, M.; Raku, T. Encimska sinteza estra arbutin undecilenske kisline in njen inhibitorni učinek na gobovo tirozinazo. Biotehnologija. Lett. 2007, 29, 481–486. [CrossRef]

95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, U.; Frisvad, JC Identifikacija potencialno varnih obetavnih tovarn glivičnih celic za proizvodnjo poliketidnih naravnih barvil za živila z uporabo kemotaksonomske utemeljitve. Microb. Dejstvo o celici. 2009. [CrossRef]

96. Dufossé, L. Enciklopedija mikrobiologije, 3. izdaja; Academic Press: New York, NY, ZDA, 2009; mikrobni pigmenti; str. 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: Učinkovita naravna snov za preprečevanje prezgodnjega fotostaranja zaradi UVA. Skin Pharmacol. Physiol. 2004, 17, 232–237. [CrossRef]

98. Becker, J.; Schafer, R.; Kohlstedt, M.; Harder, BJ; Borchert, NS; Stoveken, N. Sistemsko presnovno inženirstvo Corynebacterium glutamicum za proizvodnjo kemičnega spremljevalca ektoina. Microb. Dejstvo o celici. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. Genotoksičnost vidne svetlobe (400–800 nm) in ocena fotoprotekcije odseka, L-ergotioneina in manitola ter štirih krem ​​za sončenje. J. Photochem. Photobiol. B. 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, I.; Nielsen, DR Engineering Escherichia coli za obnovljivo proizvodnjo benzilnega alkohola. Metab. inž. 2015, 2, 39–45. [CrossRef]

101. Ni, J.; Tao, F.; Du, H.; Xu, P. Posnemanje naravne poti za novo biosintezo: naravna proizvodnja vanilina iz dostopnih virov ogljika. Sci. Rep. 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Yamada, M.; Okada, Y.; Yoshida, T.; Nagasawa, T. Proizvodnja vanilina z uporabo celic Escherichia coli, ki prekomerno izražajo izoevgenol monooksigenazo Pseudomonas putida. Biotehnologija. Lett. 2008, 30, 665–670. [CrossRef]

103. Zhao, L.-Q.; Sun, Z.-H.; Zheng, P.; Zhu, L.-L. Biotransformacija izoevgenola v vanilin z novim sevom Bacillus fusiformis. Biotehnologija. Lett. 2005, 27, 1505–1509. [CrossRef]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Velik prispevek Ehrlichove poti za proizvodnjo 2-fenil etanola/arome vrtnice pri Ashbya gossypii. FEMS Kvas Res. 2014, 14, 833–844. [CrossRef]

105. Eichmann, MMW; Schrader, J. Vodno-organski dvofazni bioproces za učinkovito proizvodnjo naravnih aromatičnih kemikalij 2-fenil etanola in 2-fenil etilacetata s kvasom. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2006, 71, 440–443. [CrossRef]

106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen, S.; Buhler, B.; Julsing, MK; Schmid, A. Inženiring produktivnosti rekombinantne Escherichia coli za tvorbo limonena iz glicerola v minimalnem mediju. Biotehnologija. J. 2014, 9, 1000–1012. [CrossRef]

107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, BC; Freire, G.; Almeida, RV Izboljšana proizvodnja ramnolipidov s Pseudomonas aeruginosa, ki prekomerno izraža estA v preprostem mediju. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [CrossRef]

108. Desai, JD; Banat, IM Mikrobna proizvodnja površinsko aktivnih snovi in ​​njihov komercialni potencial. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, T.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM Proizvodnja karotenoidov in izražanje genov v mutantnem sevu Xanthophyllomyces dendrorhous, ki prekomerno proizvaja astaksantin. Arh. Microbiol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, T.; Christou, P. Prehransko pomembni karotenoidi kot potrošniški izdelki. Phytochem. Rev. 2015, 14, 727–743. [CrossRef]

111. Henriquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Karotenoidi v mikroalgah. V Karotenoidi v naravi; Strange, E., ur.; Springer International Publishing: New York, NY, ZDA, 2016; strani 219–237.

112. Lau, N.-S.; Matsui, M.; Abdullah, AA-A. Cianobakterije: fotoavtotrofne mikrobne tovarne za trajnostno sintezo industrijskih izdelkov. J. Biomed. Biotehnologija. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. Das, A.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Oh, DK; Kim, SW Posodobitev mikrobne proizvodnje karotenoidov: uporaba najnovejših orodij presnovnega inženiringa. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2007, 77, 505–512. [CrossRef]

114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, A.; Aguilar, CN Biotehnološka proizvodnja karotenoidov s kvasovkami: pregled. Microb. Dejstvo o celici. 2014. [CrossRef]

115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, H.; Liu, S.; Kan, J.; Jin, C. Nedavni napredek na področju endofitnih eksopolisaharidov: proizvodnja, strukturna karakterizacija, fiziološka vloga in biološka aktivnost. Ogljikovi hidrati. Polym. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. Liu, F.; Ooi, VE; Chang, ST Dejavnosti odstranjevanja prostih radikalov ekstraktov gobovih polisaharidov. Life Sci. 1997, 60, 763–771. [CrossRef]

117. Jin, M.; Cai, YX; Li, JR; Zhao, H. 1,10-fenantrolin-Fe2 plus oksidativni test hidroksilnega radikala, ki ga proizvaja H2O2/Fe. Prog. Biochem. Biophys. 1996, 23, 553–555.

118. Chen, B.; Ti, W.; Huang, J.; Ju, Y.; Chen, W. Izolacija in antioksidativna lastnost zunajceličnega polisaharida iz Rhodella reticulata. World J. Microbiol. Biotehnologija. 2010, 26, 833–840. [CrossRef]

119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Upravljanje oksidativnega stresa z mikroalgami. Lahko. J. Physiol. Pharmacol. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. Hassan, HM Citotoksičnost oksiradikalov in razvoj superoksidnih dismutaz. Pri kisiku, izražanju genov in delovanju celic; Massaro, D., Clerch, L., ur.; Marcel Dekker: New York, NY, ZDA, 1997.

121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Vloga antioksidativnih encimov pri odpornosti bakterij na organske kisline. Appl. Okolje. Microbiol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. Študije o prostih radikalih, antioksidantih in kofaktorjih. Clin. Interv. Staranje 2007, 2, 219–236.

123. Abbott, DA; Suir, E.; Duong, GH; de Hulster, E.; Pronk, JT; van Maris, AJ Prekomerna ekspresija katalaze zmanjša oksidativni stres, ki ga povzroča mlečna kislina pri Saccharomyces cerevisiae. Appl. Okolje. Microbiol. 2009, 75, 2320–2325. [CrossRef]

124. Shao, N.; Beck, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, A. Fotosintetični elektron kolega vpliva na signalizacijo H2O2 z inaktivacijo katalaze v Chlamydomonas reinhardtii. Planta 2008, 228, 1055–1066. [CrossRef]

125. Evropska komisija. Prepoved testiranja na živalih. Dostopno na spletu: https://ec.europa.eu/growth/sectors/ cosmetics/animal-testing_en (dostop 14. 4. 2019).

126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Mikrobna ultravijolična sredstva za zaščito pred soncem. Nat. Rev. Microbiol. 2011, 9, 791–802. [CrossRef]

127. Plonka, PM; Grabacka, M. Sinteza melanina v mikroorganizmih-biotehnološki in medicinski vidik. Acta Biochim. Pol. 2006, 53, 429–443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. Gljivični melanin: Kaj vemo o strukturi? Spredaj. Microbiol. 2015. [CrossRef]

129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanin: fotoprotekcija za biopesticide na osnovi Bacillus thuringiensis. Biotehnologija. Lett. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, K.; Nazififi, E.; Hirai, Y.; Wada, N.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. Cianobakterijski UV-absorbirajoči pigment scytonemin prikazuje aktivnost odstranjevanja radikalov. J. Gen. Appl. Microbiol. 2012, 58, 137–144. [CrossRef]

131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, ND; Castenholz, RW Dokazi o vlogi zunajceličnega pigmenta skitonemina pri ultravijolični zaščiti pred soncem v zemeljski cianobakteriji Chlorogloeopsis sp. Photochem. Photobiol. 1992, 56, 17–23. [CrossRef]

132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Cyanobacterial sunscreen scytonemin: vloga pri fotoprotekciji in biomedicinskih raziskavah. Appl. Biochem. Biotehnologija. 2015, 176, 1551–1563. [CrossRef]

133. Darshan, N.; Manonmani, HK Prodigiosin in njegove možne uporabe. J. Food Sci. Technol. 2015, 52, 5393–5407. [CrossRef]

134. Duran, N.; Justo, GZ; Duran, M.; Brocchi, M.; Cordi, L.; Tasic, L. Napredek v Chromobacterium violaceum in lastnosti violaceina - njegov glavni sekundarni metabolit: pregled. Biotehnologija. Adv. 2016, 34, 1030–1045. [CrossRef]

135. Colabella, F.; Moline, M.; Libkind, D. UV kreme za sončenje mikrobnega izvora: ciklosporin in mikosporinu podobne aminokisline. Nedavni Pat. Biotehnologija. 2014, 8, 179–193. [CrossRef]

136. Khosravi, S.; Khodabandeh, S.; Agh, N.; Bakhtiarian, M. Učinki slanosti in ultravijoličnega sevanja na bioakumulacijo mikosporinu podobnih aminokislin v Artemiji iz jezera Urmia (Iran). Photochem. Photobiol. 2013, 89, 400–405. [CrossRef]

137. Gorbushina, AA; Whitehead, K.; Dornieden, T.; Niesse, A.; Schulte, A.; Hedges, JI Kolonije črnih gliv kot enote preživetja: hifalni ciklosporin, ki ga sintetizirajo mikrokolonialne glive, ki živijo v skalah. Lahko. J. Bot. 2003, 81, 131–138. [CrossRef]

138. Gillbro, JM; Olsson, MJ Melanogeneza in mehanizmi sredstev za posvetlitev kože - obstoječi in novi pristopi. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. Smit, N.; Vilanova, J.; Pavel, S. Lov za naravnimi sredstvi za beljenje kože. Int. J. Mol. Sci. 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. Pillaiyar, T.; Manickam, M.; Namasivayam, V. Sredstva za beljenje kože: perspektiva medicinske kemije inhibitorjev tirozinaze. J. Enzyme Inhib Med. Chem. 2017, 32, 403–425. [CrossRef]

141. Pillaiyar, T.; Namasivayam, V.; Manickam, M.; Jung, SH Zaviralci melanogeneze: posodobljen pregled. J. Med. Chem. 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. Ha, TJ; Yang, MS; Jang, DS; Choe, SU; Park, GH Inhibitorne aktivnosti derivatov flavanona, izoliranih iz Sophora flavecens za melanogenezo. Bik. Korean Chem. Soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; Kang, M.; Chung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK Raziskava in mehanizem sredstev za depigmentacijo in posvetlitev kože. fitoter. Res. 2006, 20, 921–934. [CrossRef]

144. Rosfarizan, M.; Mohd, SM; Nurashikin, S.; Madihah, MS; Arbakariya, BA Kojična kislina: Uporaba in razvoj fermentacijskega procesa za proizvodnjo. Biotehnologija. Mol. Biol. 2010, 5, 24–37.

145. Ortiz-Ruiz, CV; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Delovanje elagične kisline na poti biosinteze melanina. J. Dermatol. Sci. 2010, 5, 24–37. [CrossRef]

146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, A.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. Glivična biorazgradnja taninov iz kreozotnega grma (Larrea tridentata) in katranskega grma (Fluorensia cernua) za proizvodnjo galne in elagične kisline. Živilska tehnologija. Biotehnologija. 2008, 46, 213–217.

147. Sepúlveda, L.; Ascacio, A.; Rodríguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Ellagic acid: Biološke lastnosti in biotehnološki razvoj za proizvodne procese. Afr. J. Biotechnol. 2011, 10, 4518–4523.

148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Zina, G. Terapija z azelaično kislino pri motnjah pigmentacije. Clin. Dermatol. 1989, 7, 106–119. [CrossRef]

149. Sieber, MA; Hegel, JK Azelaična kislina: Lastnosti in način delovanja. Skin Pharmacol. Physiol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS Melaninska hiperpigmentacija kože: melazma, lokalno zdravljenje z azelaično kislino in druge terapije. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. Usuki, A.; Ohashi, A.; Sato, H.; Ochiai, Y.; Ichihashi, M.; Funasaka, Y. Zaviralni učinek glikolne kisline in mlečne kisline na sintezo melanina v celicah melanoma. Exp. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; Jin, B.; Kelly, JM Proizvodnja mlečne kisline iz obnovljivih materialov z glivami Rhizopus. Biochem. inž. J. 2007, 35, 251–263. [CrossRef]

153. Liu, X.; Liu, F.; Liu, S.; Li, H.; Ling, P.; Zhu, X. Poli-gama-glutamat iz Bacillus subtilis zavira aktivnost tirozinaze in melanogenezo. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2013, 97, 9801–9809. [CrossRef]

154. Mohorˇciˇc, M.; Friedrich, J.; Renimel, I.; André, P.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Proizvodnja belilnega encima melanina glivičnega izvora in njegova uporaba v kozmetiki. Biotehnologija. Bioproces. inž. 2007, 12, 200–206. [CrossRef]

155. Antonopoulou, I.; Varriale, S.; Topakas, E.; Rova, U.; Christakopoulos, P.; Faraco, V. Encimska sinteza bioaktivnih spojin z visokim potencialom za kozmecevtsko uporabo. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2016, 100, 6519–6543. [CrossRef]

156. Sugimoto, K.; Nomura, K.; Nišimura, T.; Kiso, T.; Sugimoto, K.; Kuriki, T. Sinteze alfa-arbutin-alfa-glikozidov in njihovi inhibitorni učinki na človeško tirozinazo. J. Biosci. Bioeng. 2005, 99, 272–276. [CrossRef]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Ramnolipidne biosurfaktante-preteklost, sedanjost in prihodnost scenarija svetovnega trga. Spredaj. Microbiol. 2014. [CrossRef]

158. Marchant, R.; Banat, IM Biosurfaktanti: trajnostna zamenjava kemičnih površinsko aktivnih snovi? Biotehnologija. Lett. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Lipidi ramnoze - biosinteza, mikrobna proizvodnja in potencial uporabe. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 1999, 51, 22–32. [CrossRef]

160. Haba, E.; Pinazo, A.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; Infante, MR; Manresa, A. Fizikalno-kemijska karakterizacija in protimikrobne lastnosti ramnolipidov, ki jih proizvaja Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Biotechnol. Bioeng. 2003, 81, 316–322. [CrossRef]

161. Piljac, G.; Piljac, T. Uporaba ramnolipidov pri celjenju ran, zdravljenju opeklinskega šoka, ateroskleroze, presaditve organov, depresije, shizofrenije in kozmetike. Patent ZDA št. US7262171B1. 2000.

162. Tuli, HS; Chaudhary, P.; Beniwal, V.; Sharma, AK Mikrobni pigmenti kot naravni barvni viri: trenutni trendi in prihodnje perspektive. J. Food Sci. Tech. 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. Caro, Y.; Venkatachalam, M.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. Pigmenti in barvila iz nitastih gliv. Glivični Metab. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, LH; Santos, C.; Galvão, LR; Cardoso, PG Proizvodnja in kemijska karakterizacija pigmentov v nitastih glivah. Mikrobiologija 2016, 162, 12–22.

165. Rao, N.; Prabhu, M.; Xiao, M.; Li, WJ Gljivični in bakterijski pigmenti: sekundarni metaboliti s široko uporabo. Spredaj. Microbiol. 2017. [CrossRef]

166. Kuddus, M.; Singh, P.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. Nedavni razvoj proizvodnih in biotehnoloških aplikacij C-fikocianina. Biomed. Res. Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, M. Nutracevtiki mikroalg. Foods 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Heterotrofne serijske in neprekinjene kulture Galdieria sulphuraria z visoko gostoto celic in proizvodnja fikocianina. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2007, 77, 69–75. [CrossRef]

169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. Mikrobna proizvodnja spojin vonja in okusa. Curr. Opin. Chem. Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. Longo, MA; Sanromán, MA Proizvodnja spojin z aromo hrane: mikrobne in encimske metodologije. Živilska tehnologija. Biotehnologija. 2006, 44, 335–353.

171. Kempf, B.; Bremer, E. Vnos in sinteza združljivih raztopljenih snovi kot odziv mikrobnega stresa na okolja z visoko osmolalnostjo. Arh. Microbiol. 1998, 170, 319–330. [CrossRef]

172. Soccol, CR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Aroma spojine, ki jih proizvajajo glive, kvasovke in bakterije. Handb. Hrana Prod. Proizv. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Bioflflavors in dišave prek gliv in njihovih encimov. Glivični potapljači. 2003, 13, 153–166.

174. Carrau, F.; Boido, E.; Dellacassa, E. Raznolikost kvasa in okusne spojine. V glivičnih presnovkih; Mérillon, JM, Ramawat, K., ur.; Springer International Publishing: Cham, Švica, 2016; str. 1–29.

175. Priefert, H.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Biotehnološka proizvodnja vanilina. Appl. Microbiol. Biotehnologija. 2001, 56, 296–314. [CrossRef]

176. Kunjapur, AM; Tarasova, Y.; Prather, KLJ Sinteza in kopičenje aromatskih aldehidov v spremenjenem sevu Escherichia coli. J. Am. Chem. Soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; Bath, TS; Adams, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ Presnovni inženiring Escherichia coli za proizvodnjo limonena in perililnega alkohola. Metab. inž. 2013, 19, 33–41. [CrossRef]

178. Okino, T.; Qi, S.; Matsuda, H.; Murakami, M.; Yamaguchi, K. Nostopeptini A in B, zaviralci elastaze iz cianobakterije Nostoc minutum. J. Nat. Prod. 1997, 60, 158–161. [CrossRef]

179. Georgousaki, K.; DePedro, N.; Činčila, A.; Aliagiannis, N.; Vicente, F.; de Castro, P.; Fotinos, S.; Genilloud, O.; Fokialakis, N. Visoko zmogljiv pregled mikrobne biotske raznovrstnosti za odkrivanje novih kozmecevtskih sredstev. Panta Med. 2015. [CrossRef]

180. Georgousaki, K.; Tsafantakis, N.; Cheilari, A.; Gumeni, S.; González, I.; González, V.; José, RT; Genilloud, O.; Fotinos, S.; Trougakos, I.; et al. Odkritje novih kozmecevtskih sredstev iz endofitnih mikroorganizmov španske biotske raznovrstnosti. Planta Med. 2017. [CrossRef]

181. Sykiotis, GP; Bohmann, D. Stresno aktivirani transkripcijski faktorji cap'n'collar pri staranju in človeških boleznih. Sci. Signal. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. Wedel, S.; Manola, M.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. Usmerjanje mehanizmov za nadzor kakovosti beljakovin z naravnimi izdelki za spodbujanje zdravega staranja. Molecules 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostaza in starajoči se proteom v zdravju in bolezni. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. Huang, L.; Chen, CH Proteasomski regulatorji: aktivatorji in inhibitorji. Curr. Med. Chem. 2009, 16, 931–939. [CrossRef]

185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, M.; Stien, D. Betulinska kislina, prvi triterpenoid volčjega boba, izoliran iz obeh Phomopsis sp. in njena gostiteljska rastlina Diospyros carbonara Benoist. Chem. Biodivers. 2017. [CrossRef] [PubMed]


Za več informacij: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Morda vam bo všeč tudi